Для оценки эндогенной интоксикации организма при самых разных патологических состояниях широко используется определение в биологических жидкостях и тканях ряда близких по смыслу лабораторных показателей, именуемых фракцией средней молекулярной массы, или веществами низкой и средней молекулярной массы, или просто «средними молекулами». В последнее время их преобладающим названием стало «молекулы средней массы» (МСМ) [1-3], которого мы и будем придерживаться.
Наши предыдущие исследования показали, что внутривенное введение крысам растворов рибозы сразу после реанимации благоприятно влияет на ряд биохимических показателей [4; 5]. В продолжение этих работ целесообразно было проверить влияние рибозы на один из интегральных показателей эндотоксикоза – МСМ, поскольку эндотоксикоз играет важную роль в патогенезе постреанимационной болезни, а в доступной литературе мы не обнаружили данных о влиянии рибозы на МСМ и другие показатели эндотоксикоза.
Цель исследования – выяснить, как изменяется уровень МСМ в крови в раннем постреанимационном периоде, а также проверить возможность влияния на него рибозы у реанимированных и здоровых животных.
Материалы и методы
Все исследования проводились в соответствии с этическими принципами Хельсинкской декларации о гуманном отношении к животным и нормативными документами, рекомендованными Европейским научным фондом (ESF). Эксперименты были выполнены на 42 неинбредных белых крысах-самцах, которые содержались в виварии на стандартном рационе и свободном доступе к воде. Из них 24 животных, наркотизированных диэтиловым эфиром, подвергли клинической смерти путем 6,5-минутной механической асфиксии с последующей реанимацией, заключающейся в проведении искусственного дыхания и непрямого массажа сердца. 8 крыс из 24 реанимировать не удалось, а 16 успешно реанимированных животных разделили на группы «Реанимация» и «Реанимация + Рибоза». Остальное 18 крыс были подвергнуты не асфиксии, а только контрольным манипуляциям: наркозу, фиксации, интубации; их разделили на группы «Контроль» и «Рибоза».
У животных всех групп через 30 мин после начала реанимации или контрольных манипуляций фиксировали в жидком азоте кровь. Для этого под эфирным наркозом быстро рассекали грудную клетку и отрезали сердце – тем самым производилась эвтаназия животных. Кровь стекала в жидкий азот, застывая в виде шариков. Эту замороженную кровь собирали затем, не размораживая, и обрабатывали как твердую ткань, ведя пересчет показателей не на единицу объема, а на грамм цельной крови. За 25 мин до эвтаназии всем крысам вводили в бедренную вену 0,9%-ный раствор NaCl из расчета 2,5 мл . кг–1 массы тела. Раствор, предназначенный для групп «Реанимация + Рибоза» и «Рибоза» содержал, кроме того, D-(–)-рибозу производства компании Fluka AG, Buchs SG (Швейцария) в дозе 50 мг × кг–1 массы тела.
В замороженном состоянии гомогенизировали навеску крови в холодной 6%-ной хлорной кислоте (НClO4), взятой в соотношении 100 мг ткани на 0,4 мл НClO4. Хлорнокислый гомогенат центрифугировали в течение 5 мин при 1000 g и 0 °С. Полученный безбелковый супернатант имеет кислую реакцию (рН = 1). В одной из аликвот нейтрализовали его раствором КОH до pH = 7, выдерживали 15 мин при 0 °C и осадок перхлората калия (KClO4) отделяли центрифугированием при вышеописанных условиях. В другой аликвоте оставляли экстракт кислым (рН = 1). Из полученных таким образом экстрактов крови удаляли органические фосфаты по методике [6], чтобы приблизить биохимические характеристики наших экстрактов цельной крови к характеристикам биологических жидкостей, в которых обычно определяют МСМ – плазмы, сыворотки крови, мочи. Затем при рН = 7 и рН = 1 снимали спектры полученных бесфосфатных экстрактов в области 230-290 нм. Кроме регистрации оптических плотностей (А230 - А290), вычисляли их соотношения при 250 нм и 260 нм (А250/А260), 280 нм и 260 нм (А280/А260), 290 нм и 260 нм (А290/А260). Известно, что соотношения оптических плотностей МСМ являются информативными показателями при изучении эндотоксикоза [3; 7; 8].
Статистическую обработку цифровых данных проводили при помощи статистического пакета Statistica 6.0 производства компании Stat Soft Inc., США. Вычисляли медиану (Me), а также нижний и верхний квартили (Q1 и Q3) для каждой выборки (группы животных). Затем выполняли сравнение формы распределения двух попарно не связанных выборок по непараметрическому критерию Вальда-Вольфовица, сравнение двух попарно не связанных выборок по их средним тенденциям при помощи критерия Колмогорова-Смирнова в пакете Statistica 6.0, а также при помощи непараметрического критерия Вилкоксона-Манна-Уитни, уровни значимости для которого брали из таблиц [9].
Результаты исследования и их обсуждение. Установлено, что через 30 мин после начала реанимации происходит уменьшение оптической плотности экстрактов крови крыс по сравнению с контролем во всей исследованной области спектра (А230 - А290) при нейтральном рН (табл. 1 и 2). При этом снижение медианных значений наблюдается при 230 нм в 1,5 раза, при 240 нм в 1,8 раза, при 250 нм в 2,1 раза, при 270 нм в 1,6 раза, при 280 нм в 1,5 раза, и при 290 нм в 1,6 раза. При измерении в кислой среде значительное снижение оптической плотности в группе «Реанимация» по сравнению с группой «Контроль» наблюдается лишь при 240 нм – в 1,5 раза, и при 260 нм – в 1,4 раза (табл. 3 и 4). Во всех случаях статистическая значимость различий не достигает уровня Р = 0,05 из-за высокой внутригрупповой вариабельности показателя. Снижения внутригрупповой вариабельности в будущих исследованиях можно добиться путем использования линейных животных, характеризующихся меньшей вариабельностью по сравнению с нелинейными крысами, которых мы применяли в настоящей работе.
Таблица 1
Оптическая плотность экстракта крови крыс в области 230-260 нм (А230 - А260) при рН = 7 через 30 мин после реанимации. Влияние рибозы (50 мг × кг–1 массы тела) на реанимированных и здоровых животных
Группы крыс
|
Длины волн, нм |
|||
А230 |
А240 |
А250 |
А260 |
|
Контроль (n=12) |
7,25 (3,75-14,75) |
7,00 (2,98-14,50) |
4,70 (2,05-10,75) |
2,08 (1,70-4,50) |
30 мин после реанимации (n=8) |
4,93 (2,54-7,50)
|
3,85 (2,19-7,50)
|
2,19 (1,94-5,75)
|
1,81 (1,28-3,07)
|
30 мин после реанимации + Рибоза (n=4) |
5,75 (4,35-11,00)
|
5,50 (4,35-10,75)
|
4,15 (3,93-9,60)
|
1,61 (1,38-7,90)
|
Рибоза (n=5) |
7,00 (4,85-7,50) |
7,00 (3,80-7,00) |
5,00 (1,98-5,25) |
2,05 (1,98-2,90) |
Таблица 2
Оптическая плотность экстракта крови крыс в области 270-290 нм (А270 - А290) при рН = 7 через 30 мин после реанимации. Влияние рибозы (50 мг × кг–1 массы тела) на реанимированных и здоровых животных
Группы крыс
|
Длины волн, нм |
||
А270 |
А280 |
А290 |
|
Контроль (n=12) |
1,86 (1,00-2,95) |
1,53 (0,88-3,30) |
1,21 (0,75-1,75) |
30 мин после реанимации (n=8) |
1,17 (0,81-1,89) |
0,99 (0,68-1,72) |
0,75 (0,53-1,49) |
30 мин после реанимации + Рибоза (n=4) |
0,95 (0,68-6,60)
|
0,78 (0,59-5,23)
|
0,58 (0,45-3,65)
|
Рибоза (n=5) |
1,38 (1,30-2,10) |
1,05 (1,00-1,70) |
0,85 (0,76-1,35) |
Таблица 3
Оптическая плотность экстракта крови крыс в области 230-260 нм (А230 - А260) при рН = 1 через 30 мин после реанимации. Влияние рибозы (50 мг × кг–1 массы тела) на реанимированных и здоровых животных
Группы крыс
|
Длины волн, нм |
|||
А230 |
А240 |
А250 |
А260 |
|
Контроль (n=10) |
3,53 (3,15-3,75) |
7,88 (4,8-10,20) |
5,25 (4,2-6,75) |
3,12 (1,26-4,50) |
30 мин после реанимации (n=6) |
3,45 (1,50-3,75)
|
5,25 (1,90-7,65) |
5,18 (2,00-5,82)
|
2,16 (1,65-4,50) |
30 мин после реанимации + Рибоза (n=4) |
3,15 (2,93-5,85)
|
4,88 (4,20-10,73)
|
4,35 (3,11-8,55)
|
1,38 (0,93-4,95)
|
Рибоза (n=4) |
3,53 (2,40-3,90) |
6,14 (3,52-9,30) |
5,31 (3,50-8,81) |
3,75 (1,47-6,38) |
Таблица 4
Оптическая плотность экстракта крови крыс в области 270-290 нм (А270 - А290) при рН = 1 через 30 мин после реанимации. Влияние рибозы (50 мг × кг–1 массы тела) на реанимированных и здоровых животных
Группы крыс
|
Длины волн, нм |
||
А270 |
А280 |
А290 |
|
Контроль (n=10) |
1,62 (0,75-3,00) |
1,26 (0,75-2,40) |
0,92 (0,54-1,68) |
30 мин после реанимации (n=6) |
1,68 (0,90-3,30)
|
1,28 (0,75-2,34)
|
0,93 (0,60-1,56)
|
30 мин после реанимации + Рибоза (n=4) |
0,98 (0,57-3,86)
|
0,81 (0,54-2,91)
|
0,62 (0,44-3,95)
|
Рибоза (n=4) |
1,86 (1,04-3,96) |
1,46 (0,84-2,94) |
1,04 (0,63-2,22) |
Примечания к таблицам 1-4:
результаты в таблицах приводятся в виде: медиана (нижний и верхний квартили), Me (Q1-Q3), и выражены в единицах оптической плотности × г -1 сырой массы крови;
n – объем выборки (число крыс в группе).
Как показали наши результаты (табл. 1-4), зависимость спектральных характеристик МСМ от рН в ряде случаев очень сильно выражена, что необходимо всегда учитывать при проведении измерений МСМ. Это объясняется физическими свойствами веществ, входящих в состав МСМ. В качестве примера в таблице 5 мы обобщили литературные данные (в частности, [10; 11]) о положениях максимумов поглощения и величинах отношений А250/А260, А280/А260 и А290/А260 при кислом и нейтральном рН у пуриновых нуклеозидов и азотистых оснований, являющихся компонентами МСМ.
Таблица 5
Влияние рН на спектральные характеристики пуриновых оснований и нуклеозидов
Пуриновые нуклеозиды и основания |
рН |
Максимум поглощения (нм) |
А250/А260 |
А280/А260 |
А290/А260 |
Аденин |
1-2 7 |
262,5 260,5 |
0,76 0,76 |
0,37-0,38 0,13 |
0,035 0,005 |
Аденозин |
1-2 6-7 |
257 259-260 |
0,84-0,85 0,78-0,80 |
0,21-0,23 0,14-0,16 |
0,03-0,04 < 0,01 |
Гуанин |
1-2 7 |
248; 276 246; 276 |
1,37 1,42 |
0,84 1,04 |
0,50 0,54 |
Гуанозин |
0,7-2 6-7 |
256-257 252-253 |
0,90-1,02 1,15-1,17 |
0,66-0,70 0,66-0,68 |
0,40-0,50 0,27-0,30 |
Гипоксантин |
0-2 6-7 |
248 249,5 |
1,40-1,45 1,32 |
0,04-0,07 0,09-0,092 |
0-0,005 0,01 |
Инозин |
2-3 6-7 |
248 248-248,5 |
1,68 1,68-1,69 |
0,24-0,25 0,25 |
0,025 0,028 |
Ксантин |
2 6-7 |
267 267 |
0,57-0,58 0,68 |
0,50-0,61 0,75 |
0,07-0,08 0,20 |
Ксантозин |
2 7-8 |
235; 263 248; 278 |
0,75 1,29-1,30 |
0,28 1,10-1,13 |
0,03 0,58 |
Мочевая кислота
|
2 7 |
231; 283
|
1,00-1,05 1,70 |
2,68-2,70 2,70 |
2,60 3,80 |
Далее было установлено, что соотношения оптических плотностей А250/А260 при рН = 1 в группе «Реанимация» в 2,5 раза ниже уровня группы «Контроль» (при сравнении медиан этих групп), причем это различие статистически значимо по критерию Вилкоксона-Манна-Уитни (Р = 0,05). Это наше наблюдение подтверждается литературными данными о повышении А260 и снижении А250, полученными при изучении различной патологии. Так, например, статистически значимое повышение оптической плотности МСМ при 260 нм в крови крыс обнаружено при черепно-мозговой травме [12]. Статистически значимое повышение оптической плотности МСМ при 260 нм выявлено в сыворотке крови больных метаболическим синдромом с клиническими проявлениями кардиоваскулярной патологии [8]. Снижение более чем в 4 раза оптической плотности МСМ при 250 нм в эритроцитах крыс было обнаружено при остром отравлении верапамилом [13].
На среднегрупповой уровень МСМ оказывает влияние важный фактор, который обычно выпадает из внимания авторов медицинских исследований. Этот фактор – пропуски в данных, вызванные гибелью части особей от изучаемой патологии [4; 5]. Мы уже отмечали выше, что из 24 крыс, подвергнутых 6,5-минутной асфиксии, нам не удалось реанимировать 8 животных, или 33,3%. Из 16 успешно оживленных крыс (это 66,7% от 24 исходных крыс, подвергнутых асфиксии и реанимации) 10 животных были включены в группу «Реанимация», но из них 2 крысы погибли в течение первых 30 минут постреанимационного периода, не дожив до забора крови. Эти 2 особи составляют 20% от оживленных крыс группы «Реанимация» или 13,3% от исходных животных (66,7 . 0,2 = 13,3). Таким образом, итоговое различие между группами «Реанимация» и «Контроль» по пропускам, вызванным гибелью животных от изучаемой патологии, равно: 33,3 + 13,3 = 46,6%.
Как любой биологический показатель, уровень МСМ в организме имеет естественную вариабельность, поэтому исходные значения этого показателя среди крыс, взятых нами в опыт, различались от особи к особи. Учитывая патогенетическое значение МСМ [7; 8; 13], логично предположить, что животные с изначально высокими содержаниями в организме (а значит и в крови) МСМ имеют меньше шансов выжить, поскольку во время асфиксии и реанимации всегда дополнительно образуются эндотоксины и количество последних может превысить порог, совместимый с жизнью. Таким образом, можно полагать, что 46,6% погибших животных в группе «Реанимация» представлены преимущественно крысами с изначально высокими уровнями МСМ, а 53,4% выживших крыс в основном имели низкие уровни МСМ перед опытом. Удаление из группы высоких цифр приводит к снижению среднегруппового уровня МСМ у выживших животных в группе «Реанимация».
В группе «Реанимация + Рибоза» в течение первых 30 минут постреанимационного периода не погибло ни одной крысы из шести. Таким образом, различие между группами «Реанимация» и «Реанимация + Рибоза» по постреанимационной летальности равно 20%. Эти 20% выживших особей имеют, скорее всего, самые высокие уровни МСМ в группе «Реанимация + Рибоза». D-рибоза, приводя к доживанию крыс до 30 минут после реанимации, тем самым, вероятно, сохраняет в группе «Реанимация + Рибоза» особей с высокими концентрациями МСМ в крови, что приводит к возрастанию среднегруппового уровня МСМ по сравнению с группой «Реанимация» при нескольких длинах волн (табл. 1-4). Введение D-рибозы здоровым животным в дозе 50 мг × кг–1 массы тела не оказывает влияния на А230 - А290 экстракта крови крыс (табл. 1-4).
Заметим, что во многих исследованиях, в том числе и в нашем, имеют место еще и случайные пропуски в данных, например нечаянная утрата биоматериала от нескольких животных. Такие пропуски не влияют на результаты и выводы исследования, если проводить (как мы делали) обработку материала не группа за группой, а в случайном порядке, соблюдая рандомизацию на всех этапах работы.
Литературные данные, собранные в обобщающих публикациях [4; 5; 14], свидетельствуют о благоприятном эффекте D-рибозы при различных патологических состояниях. В том числе этот моносахарид при схеме введения, использованной в настоящей работе (50 мг × кг–1 массы тела сразу после реанимации), оказывал корригирующее действие на ряд биохимических и физиологических показателей крыс, реанимированных после 6,5-минутной асфиксии [4; 5]. Однако, как показало настоящее исследование, положительные эффекты D-рибозы в постреанимационном периоде реализуются не через влияние на накопление МСМ в крови, а через воздействие на другие патогенетические механизмы, в частности через процессы, изучавшиеся нами в работах [4; 5; 15].
Заключение
Таким образом, учет пропусков, вызванных изучаемой патологией, позволил объяснить удивительные, на первый взгляд, факты снижения уровня МСМ у реанимированных животных по сравнению с контрольными, а также повышение МСМ в постреанимационном периоде под влиянием рибозы.