Целью настоящей работы явилось изучение основных параметров тиолового метаболизма при острой интраоперационной ишемии печени у крыс при пережатии ПДС.
Материалы и методы
Эксперименты выполнены на 40 половозрелых нелинейных белых крысах-самцах массой 150-170 г, содержавшихся в виварии ГБОУ ВПО КубГМУ Минздрава России на стандартном рационе и со свободным доступом к воде. Экспериментальную работу осуществляли в соответствии с «Правилами, принятыми в Европейской конвенции по защите позвоночных животных» (Страсбург, 1986). Под общей анестезией Золетилом 100 по схеме 15 мг/кг внутримышечно («Virbac», Франция) осуществлялась лапаротомия, выделялась ПДС и пережималась на 10 мин (группа 1, n=10), 15 мин (группа 2, n=10) и 20 мин (группа 3, n=10). Контрольную группу составили 10 псевдооперированных крыс, которым по тем же принципам производились анестезия и лапаротомия, но без пережатия ПДС. После окончания моделирования острой ишемии печени на 15-й минуте реперфузии забирался материал для исследований. Кровь отбирали из каудальной полой вены, в качестве антикоагулянта использовался гепарин, а также забирали печень.
Кровь подвергалась центрифугированию в течение 10 мин при 3000 об/мин, после чего отбиралась плазма крови, а эритроцитарная масса трижды отмывалась физиологическим раствором. Печень подвергалась гомогенизации, центрифугированию гомогената при 3000 об/мин в течение 10 мин, для дальнейших исследований использовался супернатант.
Концентрацию белка в плазме крови определяли по поглощению света образцом биожидкости в ультрафиолетовой области при 280 нм [7].
В эритроцитарной взвеси после лизиса холодной водой и гомогенате печени определяли активность ГПО и ГР, концентрацию восстановленного глутатиона (GSH) [8], в плазме крови определялись содержание восстановленного глутатиона [8] и общие SH-группы в расчете на 1 г белка [3].
Статистическую обработку экспериментальных данных проводили в соответствии с принятыми методами вариационной статистики, с использованием программного обеспечения, находящегося в свободном доступе. Различия считали достоверными, если вероятность ошибки составляла р<0,05.
Результаты и обсуждение
В системе глутатиона эритроцитов наблюдаются похожие изменения содержания и активности всех изученных компонентов. Концентрация восстановленного глутатиона сохраняется неизменной до 10 мин ишемии, затем значительно снижается. Активность ГПО и ГР синхронно возрастает до 10 мин ишемии, затем резко снижается, но активность ГПО к 15-й минуте падает ниже контрольных цифр, а ГР - до контрольных значений; к 20-й минуте активность обоих ферментов падает значительно ниже нормы (табл. 1).
Таблица 1
Система глутатиона в эритроцитах при интраоперационной ишемии печени
Длительность ишемии |
GSH, мкмоль/мл |
ГПО, мкмоль/мин на 1 мг белка |
ГР, мкмоль/мин на 1 мг белка |
Контрольная группа |
2,76±0,12 |
55,69±2,46 |
692,75±33,12 |
10 мин |
2,75±0,13 |
96,85±3,79* |
854,75±36,40* |
15 мин |
1,96±0,12* |
41,24±2,01* |
690,38±30,80 |
20 мин |
1,84±0,11* |
36,67±1,75* |
381,88±14,39* |
Примечание: * - p<0,05 в сравнении с контрольной группой
В системе глутатиона печени происходят схожие с эритроцитами изменения. Концентрация GSH в первые 10 мин ишемии печени крыс в самих гепатоцитах сохраняется в пределах нормальных значений, затем довольно резко снижается. Активность ГПО в печени при ишемии быстро повышается и остается высокой как минимум до 20-й минуты ишемии. Активность ГР к 10-й минуте эксперимента возрастает, затем быстро падает значительно ниже значений контрольной группы (табл. 2).
Таблица 2
Система глутатиона в гомогенате печени при интраоперационной ишемии печени
Длительность ишемии |
GSH, мкмоль/мл |
ГПО, мкмоль/мин на 1 мг белка |
ГР, мкмоль/мин на 1 мг белка |
Контрольная группа |
3,29±0,15 |
16,81±0,99 |
4122,83±186,15 |
10 минут |
3,18±0,14 |
20,53±0,82* |
5172,08±213,55* |
15 минут |
2,38±0,11* |
19,44±0,85* |
3238,54±119,41* |
20 минут |
2,63±0,11* |
19,75±0,78* |
3398,16±198,01* |
Примечание: * - p<0,05 по отношению к контрольной группе
В плазме крови за первые 10 мин ишемии наблюдается значительное повышение содержания GSH, что, вероятно, связано с гепатоцитолизом и выходом его из клеток печени в системный кровоток. Затем к 15-й и 20-й минутам ишемии и в плазме отмечается снижение концентрации восстановленного глутатиона ниже контрольных цифр. Общие же SH-группы, в первую очередь характеризующие состояние тиоловых групп белков плазмы крови, неуклонно снижаются, что может характеризовать быстрое развитие системного поражения организма (табл. 3). Активность ферментов в плазме крови не изучалась в связи с тем, что изменения в плазме отражают сдвиги в пораженных клетках (в нашем случае активность ферментов в самих гепатоцитах изучена) и, как правило, проявляются гиперферментемией, обусловленной прежде всего цитолизом [10].
Таблица 3
Тиолсодержащие компоненты плазмы крови при интраоперационной ишемии печени
Длительность ишемии |
GSH, нмоль/мл |
Общие SH-группы, (е.о.п./ 1 г белка)*103 |
Контрольная группа |
78,25±3,20 |
4,49±0,21 |
10 минут |
90,06±4,02* |
3,21±0,14* |
15 минут |
59,34±2,50* |
3,11±0,11* |
20 минут |
34,10±1,32* |
2,19±0,08* |
Примечание: * - p<0,05 по отношению к контрольной группе; е.о.п. - единицы оптической плотности
Наблюдаемые повышения активностей ГР и ГПО в эритроцитах и печени к 10-й минуте относятся к напряжению компенсаторных возможностей организма крысы и позволяют в определенной мере поддерживать функционирование пораженного органа и организма в целом, что подтверждается нормальными концентрациями восстановленного глутатиона в этот период ишемии. Развивающийся за первые 10 мин ишемии цитолиз подтверждается выходом GSH в плазму крови из гепатоцитов, но цитолизу подвергаются лишь уже ослабленные, наименее устойчивые к повреждению клетки, тогда как большая часть органа вполне удовлетворительно справляется с повреждающим фактором. Более длительное пережатие ПДС ведет к прогрессирующему поражению печени, клетки более не способны поддерживать гомеостаз на должном уровне, что подтверждается падением активностей ГР и ГПО, значительным снижением концентрации восстановленного глутатиона. Также результаты проведенных исследований указывают на возможности предупреждения ишемических и коррекции постишемических нарушений средствами с антиоксидантной направленностью [2], влияющими на метаболизм глутатиона.
Выводы
Таким образом, изменения тиолового метаболизма при острой ишемии печени происходят во всех изученных биологических жидкостях и гомогенате печени крыс. В динамике ишемического повреждения печени развиваются закономерные сдвиги в системе обмена глутатиона, отражающие роль тиоловых соединений в патогенезе подобного рода нарушений и расширяющие наше понимание происходящих процессов в организме на различном уровне. Некоторая синхронность изменений показателей метаболизма глутатиона в различных объектах исследований у крыс при ишемии в течение 10-20 мин позволяет предположить, что в течение 10-15 мин эксперимента происходят изменения компенсаторного характера, затем происходят срыв компенсации и прогрессирующее повреждение органа и организма в целом. Полученные данные наглядно показывают временные границы компенсаторных возможностей организма, так как система глутатиона является одной из наиболее чувствительных систем регуляции гомеостаза организма. Кроме того, данные результаты исследований говорят о перспективе коррекции гипоксических и реперфузионных нарушений препаратами, содержащими тиоловые соединения или влияющими на метаболизм глутатиона.
Работа выполнена при поддержке государственного задания Министерства здравоохранения Российской Федерации (от 28.01.2015 г. ч. 1, раздел 1) «Осуществление прикладных научных исследований, в том числе проведение доклинических исследований лекарственных средств и клинических исследований лекарственных препаратов».
Рецензенты:
Каде А.Х., д.м.н., профессор, заведующий кафедрой общей и клинической патофизиологии, государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Кубанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, г. Краснодар;
Павлюченко И.И., д.м.н., профессор, заведующий кафедрой клинической иммунологии, аллергологии и лабораторной диагностики факультета повышения квалификации и профессиональной переподготовки специалистов, государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Кубанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, г. Краснодар.