Сетевое издание

Современные проблемы науки и образования

ISSN 2070-7428

"Перечень" ВАК

ИФ РИНЦ = 1,006

Рак молочной железы (РМЖ) является наиболее распространенным злокачественным новообразованием у женщин. Каждый год в мире более двух миллионов женщин заболевают РМЖ, и уровень заболеваемости увеличивается [1]. В России, в 2023 г. выявлено 77 тысяч новых случаев заболевания РМЖ, сообщил ТАСС главный онколог Минздрава РФ, А.Д. Каприн. Из-за прогресса в скрининге, диагностике и лечении РМЖ в последние годы, уровень смертности постепенно снижается, особенно среди тех, у кого рак был обнаружен на ранней стадии [2; 3].  На протяжении десятилетий программы профилактики РМЖ следовали традиционному подходу при котором каждый пациент проходил одинаковый тип скрининга.  На ранних этапах скрининга РМЖ маммография была включена в стандартные программы исследования.  Однако традиционный подход в части случаев может оказаться небезвредным [4]. Все больше внимания начинают привлекать новые методы более персонализированного подхода к адаптации методов скрининга РМЖ для каждого пациента в зависимости от его уровня риска. В настоящее время национальные программы скрининга РМЖ не персонализированы и индивидуальные риски не принимаются во внимание. Тем не менее, оценка  маммографической плотности молочной железы, структурные особенности, семейный анамнез и генетические варианты предрасположенности к РМЖ хорошо известны как серьезные факторы риска. Что касается знания нескольких факторов риска, существует острая необходимость в индивидуальном подходе к скринингу.

До 25% случаев РМЖ могут быть наследственными, причем 20% этих случаев связаны с дефектами высокопенетрантных генов, таких как BRAC1 и BRAC2 [5]. Открытие клинически значимых мутаций, способствующих развитию РМЖ, является важным шагом в развитии молекулярной онкологии, поскольку эти мутации приводят к возникновению гетерогенных опухолей, различающихся по своему происхождению. Эти мутации играют значительную роль в прогрессировании заболевания и в настоящее время подлежат генетическому тестированию и лечению препаратами группы PARP-ингибиторов [6]. Выявление мутаций BRCA1/2 у больных РМЖ определяет необходимость обследования их родственников для выявления здоровых носителей мутации BRCA1/2 и обеспечения диагностики злокачественных новообразований на ранних стадиях, когда лечение наиболее эффективно. Наличие клинически значимых мутаций BRCA1/2 позволяет определить пациентов, которым может быть показана терапия PARP-ингибиторами, воздействующими на генетическую составляющую опухолевых клеток. Анализ мутаций в генах BRCA1/2 предусмотрен Программой государственных гарантий c 2020 года и во многих регионах включен в тарифы ОМС. Подтвержденные в настоящее время общие генетические вариации были обобщены в моделях прогнозирования риска и дают возможность оценить осуществимость программ раннего выявления и скрининга.

Цель исследования: изучить возможности генетического тестирования слюны (ротовой жидкости) для скрининга рака молочной железы.

Материал и методы исследования. Исследование проведено на базе ГБУЗ «Клинический онкологический диспансер №1» Министерства здравоохранения Краснодарского края и ФГБОУ ВО «Кубанский государственный медицинский университет» МЗ РФ.

В исследовании приняли участие 20 человек. Средний возраст исследуемых составил 51,9 ± 10,3 года. У 10 разных женщин с известными мутациями в локусах BRCA1 было проведено сравнение ДНК, выделенной из образцов крови, и ДНК из слюны с точки зрения обнаружения мутаций зародышевой линии. Еще у 10 обследованных проведено скрининговое исследования слюны  у лиц с семейным анамнезом РМЖ для выявления ассоциированных с опухолью мутаций в гене BRCA1. Близкие родственники без клинических признаков РМЖ были из семей, в которых одна женщина имела в анамнезе РМЖ.   Последующее  исследование венозной крови осуществлялось у лиц, у которых были обнаружены мутации в гене BRCA1 по данным генетического тестирования слюны. Образец цельной венозной периферической крови, полученный путем венепункции,  собирали в пластиковые пробирки объемом 10,0 мл (Becton Dickinson), содержащие в качестве антикоагулянта К2ЭДТА.  Взятие, предобработку и хранение ротовой жидкости и венозной крови для исследований генетических полиморфизмов, ассоциированных с риском развития онкопатологии проводили в соответствии с инструкцией к комплекту для выделения ДНК из биологического материала. Сбор образцов слюны (ротовой жидкости) производили сами обследуемые в предоставленный стерильный пластиковый контейнер с завинчивающейся крышкой. Все они получили подробную информацию в устной и письменной форме о целях и протоколе исследования, процедуре сбора слюны, а также добровольно подписали письменное согласие на участие в данном исследовании. За два часа до сбора слюны исследуемые женщины не принимали никакой пищи или напитков (за исключением чистой воды). За пять минут до сбора ротовой жидкости  обследуемые прополаскивали рот водой. Затем нестимулированную слюну собирали пассивным слюноотделением в отсутствие жевательных движений в стерильные пластиковые контейнеры емкостью 10 мл.  От каждого участника было получено от 3 до 5-6 мл ротовой жидкости. Чтобы образец соответствовал критериям исследования, он не должен был иметь признаков присутствия крови. Сразу после сбора образцы слюны (ротовой жидкости) центрифугировали (скорость 8000 об/мин, время 15 мин), для удаления нежелательных частиц, затем супернатант собирали и разделяли на аликвоты.  Часть аликвот каждого образца хранили при температуре от 2 до 8 градусов ºC в течение 2-4 часов для последующего производства биохимических и генетических исследований ex tempore.

Для генетического тестирования образцов биоматериала применяли набор реагентов «ОнкоГенетика», использующих эффект флуоресценции, производства ООО «НПО ДНК-Технология» (Россия) для выделения ДНК из периферической крови и выявления наследственных мутаций 185delAG, 2080delA, 4153delA, 5382insC, c.3700 _ 3704delGTAAA,c.3756 _ 3759delGTCT, 300T>G (Cys61Gly), в гене человека BRCA1 и 6174delT в гене человека BRCA2 методом ПЦР в режиме реального времени. Подготовку к ПЦР проводили с использованием ПЦР-боксов. Применяли амплификатор детектирующий «ДТ лайт» производства ООО «НПО ДНК-Технология» (Россия), совмещающего функции прецизионного программируемого термоциклера и оптической системы, позволяющей регистрировать флуоресценцию реакционной смеси непосредственно в ходе ПЦР и  осуществлялась автоматически с помощью программного обеспечения Real Time _ PCR v.7.3, поставляемого с детектирующим амплификатором.

Результаты исследования и их обсуждение

Существующие программы скрининга РМЖ кажутся недостаточным инструментом для женщин с высоким генетическим риском рака молочной железы.  Одним из современных методов обследования при подозрении на РМЖ является выполнение генетического исследования на наличие мутаций, увеличивающих риски развития заболевания.  Генетическое тестирование может значительно улучшить качество программ профилактики РМЖ, помочь выявить лиц из группы высокого риска, которым требуется интенсивное наблюдение, и женщин из группы низкого риска, которым следует избегать ненужных рентгеновских исследований и длительных интервалов между скрининговыми исследованиями до последующего контроля [7]. По имеющимся данным, мутации в генах  BRCA1 или BRCA2 повышают риски развития РМЖ до 60-70% [8]. Обнаружить мутирующие гены можно с помощью специального генетического тестирования. Утверждают, что генетическое тестирование может обеспечить подходящий способ максимизировать безопасность и минимизировать вред при скрининге РМЖ и потенциально может улучшить программу и, следовательно, индивидуализировать раннее выявление и скрининг РМЖ. Оценка генетических рисков также требуется здоровым пациенткам, имеющих близких родственниц у которых диагностирован РМЖ  или рак яичников, имеют родственников любого пола с обнаруженными изменениями в генах BRCA1 или BRCA2 либо  имеют доброкачественную опухоль молочной железы с признаками усиленного роста. 

Важным элементом любой программы генетических исследований является сбор биологических образцов для получения ДНК. На сегодняшний день при генетическом тестировании преимущественное предпочтение отдается анализам крови, которые являются наиболее используемым биоматериалом для получения ДНК высокого качества, необходимой для  анализа генов, ассоциированных с  предрасположенностью к РМЖ. Для взятия образцов крови требуется квалифицированный специалист, а связанные с процедурой боль, стресс и беспокойство могут вызывать дискомфорт у обследуемых лиц. Это особенно проблематично в случае генетических тестов для прогнозирования риска, таких как тестирование BRCA, когда тестируемый человек часто совершенно здоров. Необходимость сдачи крови в таких случаях может демотивировать некоторых потенциальных пациентов от согласия на прохождение тестирования.  Сбор крови может быть проблемой, особенно для новорожденных или людей с отклонениями в развитии или поведении. В этой связи существующие технологии генетического тестирования предрасположенностью к РМЖ все большую роль отводят неинвазивным методам получения биоматериала для генетического тестирования [9].

Сбор образцов с использованием слюны является простым методом получения ДНК зародышевой линии. Геномная ДНК может быть извлечена из слюны, которую проще получить самостоятельно. В отличие от сбора крови, для сбора слюны не требуется обученный флеботомист. Этот метод сбора ДНК становится все более популярным за последние годы благодаря простоте сбора и улучшению качества и количества ДНК, которую можно собрать из слюны [10]. Простой, дешевый и неинвазивный онкологический скрининг молочной железы является ключом к реальной эффективности ранней диагностики РМЖ. Таким образом, слюна и биомаркеры на ее основе имеют большой потенциал для клинического применения  [11].

Результаты ряда исследований постулируют, что  из-за простоты сбора, удобного хранения образцов,  использование образцов слюны является хорошей альтернативой образцам крови для получения геномной ДНК высокого качества. Слюну считают надежным источником ДНК для самых разных генетических исследований [4, 12]. Установлено, что качество геномной ДНК из образцов слюны было сопоставимо с образцами крови по показателям чистоты, генотипирования и ПЦР – амплификации [13]. Показана пригодности ДНК, выделенной из слюны, для высокопроизводительного молекулярного генотипирования путем сравнения ее эффективности с ДНК, выделенной из крови [14]. Полученные результаты позволили констатировать, что ДНК из крови и слюны показала частоту генотипирования и частоту воспроизводимости > 99% и послужили основанием для вывода, что слюна является источником  ДНК достаточного количества и качества для целей генетических исследований. Слюну можно считать эквивалентным крови материалом для генетического анализа как для полногеномного секвенирования, так и для секвенирования всего человеческого экзома [15] и таким образом ДНК слюны становится все более важным инструментом для обнаружения геномных вариаций. Сообщается, что точность генотипирования ДНК, полученной из слюны, сравнима с точностью генотипирования ДНК, полученной из крови. Более 95% SNV, выявленных в слюне, соответствовали SNV, выявленным в крови по всему геному, во всех областях кодирования генов [16,12]. Молекулярное тестирование для всех наборов парных образцов ДНК крови-слюны от одних и тех же лиц продемонстрировало уровень совпадения результатов генотипирования 99,996 % [12]. 

Сравнение ДНК, выделенной из образцов крови и ДНК из слюны с точки зрения обнаружения мутаций зародышевой линии десяти разных людей с известными мутациями в локусах BRCA1 продемонстрировало наличие идентичных мутаций BRCA1 в ДНК из слюны и крови в 100% наблюдений. По результатам проведенного скринингового исследования слюны у 30 % обследованных лиц с семейным анамнезом заболевания, но без клинических признаков РМЖ, выявлены ассоциированные с опухолью мутации в гене BRCA1. Последующее исследование венозной крови лиц, у которых были обнаружены мутации в гене BRCA1 по данным генетического тестирования слюны, во всех анализируемых случаях подтвердило наличие идентичных мутаций в гене BRCA1 в образцах крови. 

Заключение

Настоящее предварительное исследование не позволяет дать статистически значимую оценку результатов генетического тестирования слюны (ротовой жидкости) для скрининга РМЖ. Очевидно, это определяется недостаточным количеством проанализированных образцов биожидкостей. В то же время результаты данного исследования позволяют заключить, что зафиксированные результаты генотипирования однонуклеотидных полиморфизмов слюны и крови могут рассматриваться, как аргументы, свидетельствующие о целесообразности генетических исследования для раннего выявления и скрининга РМЖ. Результаты данного исследования свидетельствуют, что скрининговое исследование слюны может предоставить информацию о наличии у близких родственников пациентов, с диагностированным РМЖ, мутаций в генах, ассоциированных с предрасположенностью к РМЖ, что важно для раннего выявления и оценки молекулярной гетерогенности заболевания. Сочетание генетического тестирования слюны и крови возможно станет основой разработки эффективных тактик скрининговых и ранних диагностических исследований. Необходимы дополнительные исследования для расширенного непредвзятого анализа возможности использования тестирования слюны для обнаружения мутаций в гене BRCA1 с целью совершенствования скрининга РМЖ в сочетании с другими общепринятыми методами в составе комбинации ряда диагностических биомаркеров.