Ранее нами продемонстрировано изменение иммунного статуса при хронической почечной недостаточности (ХПН) в клинических и в экспериментальных условиях, выражающееся в активации эффекторов врожденного иммунитета и подавлении адаптивного иммунитета [2, 5]. Регуляторы гомеостаза эндогенного происхождения (гормоны, реактанты острой фазы и др.) могут выступать в роли факторов патогенеза и рассматриваться как перспективные агенты коррекции нарушений гомеостаза [1, 3, 4, 6]. При ХПН одним из факторов патогенеза изменений иммунного статуса может выступать паратиреоидный гормон (ПТГ), в избытке циркулирующий в крови в условиях вторичного гиперпаратиреоза (ГПТ). ГПТ и сопутствующие ему изменения фосфорно-кальциевого гомеостаза приводят к накоплению ионизированного кальция в цитоплазме иммунокомпетентных клеток, поэтому обоснованным способом коррекции их функционального статуса и количественного представительства может быть применение блокаторов кальциевых каналов. Цель работы - исследовать иммунный статус при экспериментальном гиперпаратиреозе и влияние на него блокатора кальциевых каналов амлодипина.
Материалы и методы исследования. Работа выполнена на 90 белых нелинейных половозрелых крысах-самцах массой 200-220 г, находящихся в стандартных условиях вивария, случайным образом разделенных на 3 группы: I - интактная, II - ГПТ, III - ГПТ и введение блокатора кальциевых каналов амлодипина. Все манипуляции с экспериментальными животными выполнялись при строгом соблюдении требований Европейской конвенции (Страсбург, 1986) по содержанию, кормлению и уходу за подопытными животными, а также выводу их из эксперимента с последующей утилизацией. В постановке опытов руководствовались требованиями Всемирного общества защиты животных (WSPA) и Европейской конвенции по защите экспериментальных животных 86/609. ГПТ у крыс II группы моделировали содержанием на гиперфосфатной диете по методу Draper H.H. etal. [7] в нашей модификации. В течение 120 дней рацион крыс состоял из синтетической гиперфосфатной смеси (0,6% кальция и 4,2% фосфора). Развитие ГПТ верифицировали по увеличению концентрации ПТГ в плазме. Животным III группы начиная с 120-х суток эксперимента ежедневно вводили блокатор кальциевых каналов в составе препарата «Амлодипин-Тева» (международное непатентованное название: амлодипин, Израиль) в дозе 0,25 мг/кг в сутки в течение 7 дней, суммарная доза 1,75 мг/кг. Кровь для исследований забирали пункцией левого желудочка сердца. Количество лейкоцитов в крови определяли общепринятым меланжерным методом в камере Горяева. Лейкоцитарную формулу подсчитывали в мазках крови, окрашенных по Романовскому-Гимзе, количество клеток выражали в относительных (%) и абсолютных (•109/л) величинах. Исследование поглотительной способности нейтрофилов периферической крови проводили на модели поглощения частиц монодисперсного (диаметр 1,7 мкм) полистирольного латекса. С помощью иммерсионной микроскопии учитывали активность фагоцитоза - (%) клеток, захвативших хотя бы одну частицу латекса, интенсивность фагоцитоза - (у.е.) число поглощенных микросфер латекса в 100 подсчитанных клетках и фагоцитарное число - (у.е.) число поглощенных микросфер латекса на один нейтрофил. Генерацию активных форм кислорода нейтрофилами оценивали в тесте восстановлении нитросинего тетразолия (НСТ) в его нерастворимую форму диформазан (НСТ-тесте). Проводили спонтанный и индуцированный НСТ-тест, с помощью иммерсионной микроскопии определяли активность - процент клеток, восстанавливающих НСТ, и интенсивность НСТ-теста, дифференцируя клетки в зависимости от заполнения площади цитоплазмы. Функциональный резерв нейтрофилов определяли как отношение показателей индуцированного НСТ-теста к спонтанному. Оценку гуморального иммунного ответа проводили по количеству антителообразующих клеток (АОК) в селезенке крыс, иммунизированных аллогенными эритроцитами, в абсолютных величинах и в пересчете на ядросодержащие клетки (ЯСК). Реакцию гиперчувствительности замедленного типа (ГЗТ) у крыс, иммунизированных аллогенными эритроцитами, оценивали по выраженности воспалительного отека стопы. Статистический анализ проведен с использованием пакета прикладных программ Statistica for Windows v.10.0. Проверку статистических гипотез проводили с использованием критериев Краскела-Уоллиса, Манна-Уитни, Вальда-Вольфовитца, наличие связи между показателями исследовали с помощью коэффициента корреляции Спирмена.
Результаты исследования и их обсуждение. Установлено, что при экспериментальном ГПТ в периферической крови изменяется количественный состав лейкоцитов, в относительных величинах увеличивается количество нейтрофилов за счет палочкоядерных и сегментоядерных форм, увеличивается количество моноцитов, снижается количество лимфоцитов (табл. 1). Пересчет показателей на абсолютные величины выявил моноцитопению и лимфоцитопению, количество лимфоцитов снижается в среднем на 53% по сравнению с группой контроля (табл. 2). При оценке функциональной активности нейтрофилов - ключевых эффекторов врожденного иммунитета - отмечено увеличение интенсивности спонтанного и индуцированного НСТ-теста соответственно на 50% и 26% от средних величин в контрольной группе. Показатели поглотительной способности фагоцитов - активность, интенсивность фагоцитоза и фагоцитарное число - значимо не изменяются. Исследование адаптивного иммунитета при ГПТ выявило угнетение Th1-зависимого иммунного ответа, оцениваемого по интенсивности реакции ГЗТ, а также Th2-зависимого иммунного ответа при подсчете АОК в селезенке в абсолютных величинах и в пересчете на ЯСК. Полагаем, что депрессия показателей адаптивного иммунитета в определенной мере обусловлена лимфоцитопенией. При проведении корреляционного анализа нами установлена прямая средней силы статистически значимая связь между количеством лимфоцитов в периферической крови и абсолютным количеством АОК в селезенке (коэффициент корреляции Спирмена R= 0,69; p<0,05) и интенсивностью реакции ГЗТ (коэффициент корреляции Спирмена R= 0,73; p<0,05).
Таблица 1
Влияние амлодипина на количественный состав лейкоцитов в периферической крови при экспериментальном гиперпаратиреозе в относительных величинах (M±m)
Показатели |
Группа 1 Контроль (n=18) |
Группа 2 ГПТ(n=6) |
Группа 3 ГПТ+АН(n=6) |
Эозинофилы, % |
1,94±0,61 |
1,00±0,26 |
1,00±0,26 |
Базофилы, % |
0 |
0,17±0,17 |
0,17±0,17 |
Нейтрофилы п/ядерные, % |
2,78±0,53 |
7,67±0,56 * |
3,83±0,48 ** |
Нейтрофилы с/ядерные, % |
31,00±1,42 |
47,67±3,22 * |
34,17±3,84 |
Нейтрофилы всего, % |
33,77±1,23 |
55,33±3,16 * |
38,00±3,80 ** |
Лимфоциты, % |
57,61±1,19 |
37,50±3,25 * |
50,83±3,90 ** |
Моноциты, % |
6,67±0,86 |
6,00±0,52 |
10,00±0,37 ** |
Примечание. Здесь и далее * - статистически значимые (р<0,05) различия с группой 1, ** - с группой 2.
Таблица 2
Влияние амлодипина на количественный состав лейкоцитов в периферической крови при экспериментальном гиперпаратиреозе в абсолютных величинах (M±m)
Показатели |
Группа 1 Контроль (n=18) |
Группа 2 ГПТ(n=6) |
Группа 3 ГПТ+АН(n=6) |
Лейкоциты, • 109/л |
8,34±0,98 |
6,18±0,81 |
7,68±0,85 |
Эозинофилы, • 109/л |
0,11±0,14 |
0,06±0,02 |
0,09±0,03 |
Базофилы |
0 |
0,01±0,01 |
0,02±0,02 |
Нейтрофилы п/ядерные, • 109/л |
0,26±0,06 |
0,46±0,05 |
0,30±0,06 |
Нейтрофилы с/ядерные, • 109/л |
2,54±0,31 |
3,03±0,56 |
2,59±0,34 |
Нейтрофилы всего, • 109/л |
2,79±0,34 |
3,49±0,61 |
2,89±0,37 |
Лимфоциты, • 109/л |
4,77±0,54 |
2,23±0,20 * |
3,91±0,59 ** |
Моноциты, • 109/л |
0,66±0,14 |
0,38±0,08 |
0,76±0,08 ** |
Эффект ПТГ на иммунокомпетентные клетки и формирование иммунного статуса при гиперпаратиреозе могут быть связаны с прямым и опосредованным действием. Установлено, что 2-й тип рецептора к ПТГ (PTH2R) экспрессируется на гранулоцитах и в меньшей степени - на моноцитах и лимфоцитах [9]. В литературе отсутствует единое мнение о векторе изменений определенных функций фагоцитов при ХПН в связи с повышением концентрации ПТГ при вторичном гиперпаратиреозе: исследователи констатируют повышение, снижение или отсутствие изменений адгезии, хемотаксиса, поглотительной и киллинговой способностей. Активация фагоцитов в периферической крови при гиперпаратиреозе может быть связана с повышением внутриклеточной концентрации Ca2+ и сопутствующими изменениями активности внутриклеточных мессенджеров (аденилатциклазы, активация кальцийзависимых мессенджеров - транскрипционных факторов Spi1/PU.1, AP-1/FOS и последующая активация семейства генов кальгранулинов S100-S100A8 и S100A9, генов CCL2 /MCP-1, CD14, FOLR2), интенсивности углеводного обмена, захвата и утилизации кислорода и иными факторами [8]. Большинство исследователей констатируют связь вторичного ГПТ при ХПН с дисфункцией Т- и В-звена иммунитета, прежде всего из-за повышения базального уровня цитозольного кальция [10]. Показательно, что паратиреоидэктомия часто приводит к восстановлению иммунного статуса и нивелированию клинических эквивалентов иммунодефицита.
Применение амлодипина при экспериментальном ГПТ приводит к изменению количественного представительства лейкоцитов в периферической крови. Так, в относительных величинах полностью восстанавливается количество нейтрофилов, лимфоцитов, увеличивается количество моноцитов (табл. 1). При пересчете показателей на абсолютные величины обнаружено восстановление количества лимфоцитов и моноцитов в крови (табл. 2). В условиях применения амлодипина изменяется функциональная активность нейтрофилов в крови (табл. 3). Увеличиваются интенсивность фагоцитоза (в среднем на 48% от значений в контрольной группе) и фагоцитарное число (в среднем на 18%). Амлодипин изменяет показатели генерации активных форм кислорода нейтрофилами - повышается активность спонтанного НСТ-теста, снижается функциональный резерв нейтрофилов, оцениваемый по активности НСТ-теста. Применение амлодипина приводит к увеличению показателей адаптивного иммунитета - восстанавливаются интенсивность реакции ГЗТ и количество АОК в селезенке в пересчете на ЯСК (табл. 4).
Таблица 3
Влияние амлодипина на показатели врожденного иммунитета при экспериментальном гиперпаратиреозе (M±m)
Показатели |
Группа 1 Контроль (n=18) |
Группа 2 ГПТ(n=6) |
Группа 3 ГПТ+АН(n=6) |
Активность фагоцитоза, % |
33,22±2,76 |
29,00±2,89 |
32,67±2,49 |
Интенсивность фагоцитоза, у.е. |
0,69±0,07 |
0,83±0,09 |
1,23±0,05 * ** |
Фагоцитарное число, у.е. |
2,05±0,09 |
3,16±0,62 |
3,84±0,29 * |
НСТ-тест спонт., активность, % |
9,94±0,99 |
10,00±0,63 |
16,67±0,71 * ** |
НСТ-тест спонт., индекс |
0,16±0,02 |
0,24±0,01 * |
0,27±0,02 * |
НСТ-тест инд., активность, % |
19,28±1,98 |
19,33±0,61 |
20,33±0,76 |
НСТ-тест инд., индекс |
0,27±0,02 |
0,34±0,01 * |
0,36±0,03 * |
Функц. резерв (акт-ть НСТ-теста) |
2,07±0,23 |
1,98±0,17 |
1,23±0,06 * ** |
Функц. резерв (инт-ть НСТ-теста) |
1,84±0,16 |
1,45±0,04 |
1,34±0,09 * |
Таблица 4
Влияние амлодипина на показатели адаптивного иммунитета при экспериментальном гиперпаратиреозе (M±m)
Показатели |
Группа 1 Контроль (n=18) |
Группа 2 ГПТ(n=6) |
Группа 3 ГПТ+АН(n=6) |
ГЗТ, мл |
0,38±0,03 |
0,24±0,04 * |
0,41±0,07 ** |
ЯСК, •106 ЯСК |
192,2±24,7 |
156,17±14,12 * |
771,59±152,95 ** |
ЯСК, •104 |
125,3±33,5 |
74,05±5,03 * |
105,17±34,46 |
По данным других исследователей, применение при ГПТ таких блокаторов кальциевых каналов, как верапамил, нифедипин, амлодипин и иные, нормализует содержание кальция, АТФ и углеводов в цитоплазме, но только частично восстанавливает функцию фагоцитов [8].
Выводы
1. При экспериментальном индуцированном диетой гиперпаратиреозе развиваются лимфоцитопения, активация генерации активных форм кислорода нейтрофилами и угнетение Th1-зависимого и Th2-зависимого иммунного ответа. Угнетение Th1-зависимого и Th2-зависимого иммунного ответа прогрессирует по мере снижения количества лимфоцитов в крови.
2. Применение блокатора кальциевых каналов амлодипина в суммарной дозе 1,75 мг/кг при экспериментальном гиперпаратиреозе приводит к восстановлению количества лимфоцитов в крови и показателей Th1-зависимого и Th2-зависимого иммунного ответа, активации поглотительной способности и снижению функционального резерва генерации активных форм кислорода нейтрофилами.
Рецензенты:Куренков Е.Л., д.м.н., профессор, заведующий кафедрой анатомии человека ГБОУ ВПО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Челябинск;
Цейликман В.Э., д.б.н., профессор, заведующий кафедрой биологической химии ГБОУ ВПО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Челябинск.
Библиографическая ссылка
Осиков М.В., Черепанов Д.А., Федосов А.А. ИММУННЫЙ СТАТУС ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ ГИПЕРПАРАТИРЕОЗЕ И ЕГО КОРРЕКЦИЯ БЛОКАТОРАМИ КАЛЬЦИЕВЫХ КАНАЛОВ // Современные проблемы науки и образования. – 2015. – № 1-1. ;URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=19131 (дата обращения: 10.10.2024).