Сетевое издание

Современные проблемы науки и образования

ISSN 2070-7428

"Перечень" ВАК

ИФ РИНЦ = 1,006

• Авторы
• Резюме
• Рецензия
• Файлы
• Ключевые слова
• Литература

Гудков Г.В. 1 Пивень А.В. 2 Золотавина М.Л. 2

---

1 ГБОУ ВО «КубГМУ» Минздрава России

2 ФГБОУ ВО «КубГУ»

Раннее определение пола плода необходимо не только для удовлетворения любопытства родителей, но также и для определения наличия трисомий, моносомий и прочих аберраций числа половых хромосом, имеющих довольно высокую частоту в популяции, сопоставимую с частотой трисомий по 21-ой, 18-ой и 13-ой хромосомам. Аномалии половых хромосом сказываются на умственном, психическом и репродуктивном здоровье больного. Существующие риски прерывания беременности при использовании методов инвазивной пренатальной диагностики анеуплоидий делают актуальным развитие технологий неинвазивной пренатальной диагностики. Один из таких методов может быть реализован на основе анализа коротких тандемных повторов микросателлитной днк трофобластов, циркулирующих в кровотоке матери. Применение данного метода позволяет провести успешную диагностику пола и аберраций половых хромосом плода, начиная с 8 недели гестации.

Рецензия № 1

1774 KB

Рецензия № 2

1772 KB

Рецензия № 3

784 KB

Рецензия № 4

784 KB

Статья в формате PDF

203 KB

неинвазивная пренатальная диагностика

str анализ

трофобласты

трисомия

проточная цитометрия

микросателлитные маркеры

полногеномная амплификация.

1. Буяновская О.А. Молекулярно-генетические методы в пренатальной диагностике хромосомных аномалий / О.А. Буяновская и др. // Акушерство и гинекология. – 2012. – № 8. – С. 3-9.

2. Мельниченко Г.А. Синдром Клайнфельтера / Г.А. Мельниченко, С.Ю. Калинченко, Д.А. Гусакова. – Москва: Практическая Медицина, 2007. – С. 5-7.

3. Пантюх К.С. Неинвазивная пренатальная диагностика анеуплоидий плода, основанная на секвенировании внеклеточной ДНК крови беременной женщины / К.С. Пантюх, Е.С. Шубина // Акушерство и гинекология. – 2015. – № 8. – С. 5-11.

4. Сухих Г.Т. Неинвазивная пренатальная диагностика анеуплоидий методом высокопроизводительного секвенирования (NGS) группе женщин высокого риска / Г.Т. Сухих и др. // Акушерство и гинекология. – 2015. – № 4. – С. 5-11.

5. Breman A.M. Evidence for feasibility of fetal trophoblastic cell-based noninvasive prenatal testing / A.M. Breman et al. // Prenat Diagn. – 2016. – Vol. 36, № 11. – P. 1009-1019.

6. Brigham N. The Gale Encyclopedia of Genetic Disorders / N. Brigham – Farmington Hills: Thomson Gale, 2005. – Vol. 2. – С. 1369-1371.

7. Emad A. Rapid aneuploidy detection of chromosomes 13, 18, 21, X and y using quantitative fluorescent polymerase chain reaction with few microdissected fetal cells / A. Emad et al. // Fetal Diagnosis and Therapy. – 2015. – Vol. 38, № 20. – P. 65-76.

8. Gudkov G.V. Early diagnostics of fetal aneuploidies by analyzing the polymorphisms of microsatellite DNA of trophoblasts circulating in the maternal bloodstream. / G.V. Gudkov et al. // European Journal of Biomedical and Life Sciences. – 2017. – № 1. – P. 69-73.

9. Manoussaka M.S. Flow cytometriccharacterisation of cells of differing densities isolated from human term placentae and enrichment of villous trophoblast cells / M.S. Manoussaka et al. // Placenta. – 2005. – Vol.26, № 4. – P. 308-318.

10. Megan A. Non-invasive prenatal testing: a review of international implementation and challenges / A. Megan et al. // Int J Womens Health. – 2015. – № 7. – P. 113-126.

11. Mouawia H. Circulating trophoblastic cells provide genetic diagnosis in 63 fetuses at risk for cystic fibrosis or spinal muscular atrophy / H. Mouawia et al. // Reprod Biomed Online. – 2012. – № 25. – P. 508-520.

12. Nicolaides K.H. Validation of targeted sequencing of single-nucleotide polymorphisms for non-invasive prenatal detection of aneuploidy of chromosomes 13, 18, 21, X, and Y / K.H. Nicolaides et al. // Prenatal Diagnosis. – 2013. – Vol.33, № 6. – Р. 575-579.

13. Purwosunu Y. Clinical potential for noninvasive prenatal diagnosis through detection of fetal cells in maternal blood / Y. Purwosunu et al. // Taiwanese journal of obstetrics & gynecology. – 2006. – Vol. 45, № 1. – P. 10-20.

14. Tartaglia N.R. A review of trisomy X (47, XXX) / N.R. Tartaglia et al. // Orphanet J Rare Dis. – 2010. – Vol. 5, № 8. – С. 5=8.

15. Vorona E. Clinical, endocrinological, and epigenetic features of the 46, XX male syndrome, compared with 47,XXY Klinefelter patients / E. Vorona et al. // J. Clin. Endocrinol. Metab. – 2007. – Vol. 92, № 9. – С. 3458-3465.

Основным методом диагностики пола плода в медицинской практике на данный момент является УЗИ диагностика, самый ранний срок определения пола по УЗИ – 11–12 недель, но точным данный метод может считаться только на 18 неделе. В то же время определение пола плода необходимо не только для удовлетворения любопытства родителей, но также и для определения наличия трисомий, моносомий и прочих аберраций числа половых хромосом, имеющих довольно высокую частоту в популяции: Синдром Шерешевского – Тёрнера 1:1500; Синдром Клайнфельтера 1:500; Синдром де ля Шапеля 1:20000 XYY-синдром 1:1000, ХХХ – 1:1000 и другие [2, 6, 14, 15].

Существующие методы инвазивной пренатальной диагностики позволяют определить пол плода на ранних стадиях гестации, но из-за недостатков: угроза прерывания беременности, развитие кровотечения и т.д., не целесообразно применять их без серьезных медицинских показаний [1, 10]. Поэтому использование методов неинвазивной пренатальной диагностики, для которых исследуемым материалом является кровь матери, может быть как ранней альтернативой УЗИ, так и безопасной альтернативой существующим инвазивным методам [3, 4].

Один из перспективных неинвазивных методов: захват трофобластов, циркулирующих в крови матери – генетический материал трофобластов при должном уровне обогащения и захвата может служить источником фетальной ДНК для пренатального генетического анализа начиная с 9-й недели гестации [9,11]. В то же время низкое содержание трофобластов в материнском кровотоке делает необходимым совершенствование протоколов молекулярной диагностики амплифицированного генетического материала, полученного из единичной клетки [12, 13].

Для определения пола можно использовать STR анализ, для этого библиотека амплифицированных фрагментов должна репрезентативно отражать геном единичной клетки и давать воспроизводимые результаты в ходе фрагментного STR анализа микросателлитной ДНК [5, 7, 8].

Цель исследования заключалась в ранней диагностике пола плода и аберраций числа половых хромосом, на основе STR анализа локусов половых хромосом на основе ДНК трофобластов, циркулирующих в кровотоке матери.

Материал и методы

В работе были исследованы 15 образцов периферической крови, полученные от женщин с одноплодной беременностью в сроках гестации 8–13 недель. Средний возраст обследованных женщин составил 28 лет (от 23 до 37 лет). У 8 (53,3 %) настоящая беременность была первой, у остальных – повторные.

Периферическую гепаринизированную венозную кровь беременных разбавляли фосфатно-солевым буфером и выделяли мононуклеары центрифугированием на градиенте Histopaque-1077 (плотность 1.077 г/мл). Полученный образец мононуклеарных клеток (~ 2×107 клеток в 800 мкл) подвергали негативной иммуномагнитной сепарации по маркерам зрелых линейно дифференцированных клеток (набор BD Human Lineage Cell Depletion Set). Клетки окрашивали антителами против HLA-G, Trop-2, и CD45, ядра окрашивали Hoechst 33342. Сортировку трофобластов выполняли на BD FACS AriaIII (BD Biosciences, США). Полногеномную амплификацию ДНК отсортированных клеток проводили с набором PicoPLEX™ WGA Kit (Rubicon Genomics, США) на амплификаторе С-1000 (Bio-Rad Laboratories, Inc., США) с электрофоретическим контролем на Agilent 2200 TapeStation (Agilent Technologies, США). Амплифицированную ДНК использовали для количественной флуоресцентной ПЦР с реагентами Aneufast Multiplex QF-PCR Kit (Genomed, United Kingdom), содержащими STR маркеры к микросателлитной ДНК половых хромосом. Фрагментный анализ продуктов количественной флуоресцентной ПЦР выполняли на генетическом анализаторе ABI PRISM ABI ABI 3500xL (Applied Biosystems, США) с размерным стандартом GeneScan™ 600 LIZ® Size Standard v2.0 и программным обеспечением GeneMapper® Software v5.0.

Результаты

Центрифугирование в градиенте плотности с последующей магнитной сепарацией позволило получить взвесь клеток, максимально обогащенную трофобластами. Средняя концентрация выделенных клеток после негативной сепарации составила ~ 4,72×105 клеток/мл, степень истощения превышала 90 % (93,1±2,14 %).

Негативную фракцию клеток подвергали специфическому иммуно-окрашиванию для выявления популяции трофобластов. Внутри гейта живых ядросодержащих клеток, негативных по панлейкоцитарному маркеру (CD45), выделяли двойной позитивный гейт HLA-G+Trop-2+, который использовали для дальнейшей сортировки (рис. 1).

Рис. 1. Выделение гейта сортировки трофобластов (Trop-2⁺HLA-G⁺) среди популяции клеток негативных по CD45

Число клеток-кандидатов, удовлетворяющих критериям сортировки CD45–HLA-G+Trop-2+, составило 34,4±10,3 клеток. Далее отсортированные в пробирки единичные клетки-кандидаты подвергали полногеномной амплификации. Электрофоретический контроль во всех образцах был положительным со средней концентрацией ДНК после очистки 56,8±10,1 нг/мкл.

На основе полногеномной амплификации получали библиотеку амплифицированных фрагментов ДНК единичных клеток для последующей мультиплексной количественной флуоресцентной ПЦР с использованием флуоресцентно-меченных праймеров, специфичных к индивидуальным STR последовательностям, с последующим разделением фрагментов капиллярным электрофорезом для сравнения числа пиков и их высоты для каждого STR маркера.

Наибольшая плотность длин фрагментов ДНК, полученных в ходе полногеномной амплификации, приходилась на диапазон 400–700 п.н., в связи с этим для определения пола были отобраны наиболее короткие STR маркеры (длиной менее 300 п.н.) для половых хромосом (табл. 1).

Таблица 1

STR маркеры, использованные для определения полиморфизмов гоноосом (указаны максимальные диапазоны длин аллелей)

Библиографическая ссылка