Электронный научный журнал
Современные проблемы науки и образования
ISSN 2070-7428
"Перечень" ВАК
ИФ РИНЦ = 0,737

ВЛИЯНИЕ КОМПЛЕКСНОГО ПРОБИОТИКА «ТЕТРАЛАКТОБАКТЕРИН» НА УРОВЕНЬ ЕСТЕСТВЕННОЙ РЕЗИСТЕНТНОСТИ ТЕЛЯТ, СОДЕРЖАВШИХСЯ НА ТЕРРИТОРИИ С ПОВЫШЕННОЙ ПЛОТНОСТЬЮ ЗАГРЯЗНЕНИЯ ПОЧВЫ 137CS.

Лифанова Я.В. 1
1 ФГБОУ ВПО «Брянская государственная сельскохозяйственная академия»
Установлено, что у телят, содержавшихся в хозяйстве с повышенной плотностью загрязнения почвы 137Cs, снижена активность защитных механизмов по сравнению с аналогичными животными в чистой зоне в основном за счет низкой фагоцитарной активности нейтрофилов крови. Ежедневное выпаивание телятам 5-недельного возраста в течение 21 суток пробиотика «Тетралактобактерин» в дозе 1 г/гол (2,2•1010 КОЕ/г) привело к повышению активности защитных механизмов организма телят, способствовало повышению адаптационного резерва числа нейтрофилов крови, способных к поглощению чужеродного материала через месяц после окончания применения препарата.
естественная резистентность.
пробиотик
телята
1. Адамович В.Л., Меркушина О.С. Влияние малых доз радиации на биологические изменения в популяционных группировках мышевидных грызунов // Радиационная биология. Радиоэкология. - 1997. - Т.37. - Вып. 3. - С. 303-311.
2. Аклеев А.В., Варфоломеева Т.А. Состояние гемопоэза в условиях многолетнего облучения костного мозга у жителей прибрежных сел р. Теча. // Радиац. биология. Радиоэкология. - 2007. - Т.47. - №3. - С. 307-321.
3. Бурлакова Е.Б., Голощапов А.Н., Жижина Г.П., Конрадов А.А.Новые аспекты закономерностей действия низкоинтенсивного облучения в малых дозах // Радиац. биология. Радиоэкология. - 1999. - Т.39. - №1. - С. 26-34.
4. Бурлакова Е.Б., Найдич В.И. К 25-летию с момента аварии на Чернобыльской АЭС. // Радиационная биология. Радиоэкология. - 2011. - Т.51. - №4. - С. 389-398.
5. Воробьев А.А., Лыкова Е.А. Бактерии нормальной микрофлоры: биологические свойства, защитные функции. Микробиологический журнал. - 1999. - №6. - С. 102-105.
6. Горлов И.Ф. Определение естественной резистентности у животных // Ветеринария. - 1987. - № 10. - С. 22-25.
7. Жибинов В.И. Применение лизосомально-катионного теста // Ветеринария. - 1983.- № 8. - С. 30-31.
8. Козлова Е.К., Черняев А.П., Алексеева П.Ю. и др. // Радиац. биология. Радиоэкология. - 2005. - Т. 45. - №6. - С. 653-656.
9. Кондрахин И.П., Архипов А.В., Левченко В.И. и др. Методы ветеринарно-клинической лабораторной диагностики: Справочник / Под ред. И.П. Кондрахина. - М.: КолосС., 2004. - 250 с.
10. Крапивина Е.В., Иванов Д.В., Лифанова Я.В. Влияние разных доз пробиотика «Тетралактобактерин» на морфобиохимические характеристики гомеостаза телят // Вестник ОрелГАУ. - 2011. - №4(31). - С.41-44.
11. Кузин А.М. Радиационная биохимия. - М.: Изд-во АН СССР, 1962. - С. 335.
12. Макаревич Н.А. Лизосомально-катионный тест для оценки уровня резистентности организма крупного рогатого скота // Ветеринария. - 1988. - № 5. - С. 26-28.
13. Макарцев Н.Г. Использования пробиотика лактобактерина-С при выращивании поросят. Мат. межд. научно-практ. конф.: Актуальные проблемы кормления сельскохозяйственных животных. - Дубровицы, 2007. - С. 47-51.
14. Маренков В.Г. Естественная резистентность и продуктивное долголетие коров черно-пестрой породы. // Сельскохозяйственная биология. - 2004. - №4. - С. 89-93.
15. Маянский, А.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. А.Н. Маянский. - Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1989. - 344 с.
16. Михайлов В.Ф., Мазурик В.К., Бурлакова Е.Б. Сигнальная функция активных форм кислорода в регуляторных сетях ответа клеток на повреждающие воздействия: участие в реализации радиочувствительности и нестабильности генома. // Радиац. биология. Радиоэкология. - 2003. - Т.43. - №1. - С. 5-18.
17. Михеев А.Н., Гуща Н.И., Малиновский Ю.Ю. Эпигенетические реакции клеток на действие ионизирующей радиации. // Радиац. биология. Радиоэкология. - 1999. - Т.39. - №5. - С. 548-556.
18. Нормы и рационы кормления с.-х. животных. / Справочное пособие. Издание переработанное и дополненное. Под ред. Калашникова А.П. Фисинина В.И., Щеглова В.В. и др. - М., 2003. - 456 с.
19. Панин А.Н., Малик Н.И., Степаненко И.П. Влияние пробиотика Стрептобифид-форте на клеточный иммунитет. Аграрная наук. - 2000., - №7. - С. 23-26.
20. Пахмутов И.А., Ульянова М.С. Оценка функциональной активности нейтрофилов крови животных // Ветеринария. - 1984. - №3. - С. 68-69
21. Пигаревский, В.Е. Зернистые лейкоциты и их свойства. / В.Е. Пигаревский - М.: Медицина, 1978. - 128с.
22. Плохинский, Н.А. Биометрия. Из-во Сибирского отделения АН СССР. - Новосибирск, 1961. - 364с.
23. Самбуров Н.В. Физиологические и иммунологические аспекты применения иммуномодуляторов // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. - 2006. - №1. - С. 41-43.
24. Тарабарина Н.П., Пинегин Б.В. Биологические свойства антибиотико-устойчивых штаммов молочнокислых бактерий. // Микробиология. - 1979. - №7. - С. 88-92.
25. Тараканов Б.В., Николичева Т.А., Алешин В.В. Пробиотики. Достижения и перспективы использования в животноводстве. Прошлое, настоящее и будущее зоотехнической науки: Труды ВИЖ: - 2004. - Т.62. - №3. - С. 69-73.
26. Фёдоров Ю.Н. Диагностические алгоритмы в клинической ветеринарной иммунологии. Научные основы производства ветеринарных препаратов: Материалы междун. Научно-практической конф., посвященной 49-летию ВНИиТИБП, 2009. - С. 111-117.
27. Хаитов Р.Б., Пинегин Б.В., Истамов Х.И. Экологическая иммунология. - М.: ВНИРО, 1995. - 219 с.
28. Чумаченко В.Е., Высоцкий А.М., Сердюк Н.А., Чумаченко В.В. Определение естественной резистентности и обмена веществ у сельскохозяйственных животных. - Киев: Урожай, 1990. - 136с.
29. Шубич М.Г., Медникова В.Г. NBT-тест у детей в норме и при гнойно-бактериальных инфекциях // Лаб. дело. - 1978. - № 1. - С. 663-666.
30. Шубич, М.Г. Тест с нитросиним тетразолем в оценке иммунологического статуса детей с гнойно-септическими заболеваниями. / М.Г. Шубич, И.В. Нестерова, В.М. Старченко // Лаб. дело. - 1980. - № 7. - С. 342-344.
31. Щепеткина С.В. Влияние пробиотика мультибактерин ветеринарный ОМЕГА-10 на продуктивность и естественную резистентность поросят при инфекционных желудочно-кишечных болезнях: Автореф. дис. канд. вет. наук. - СПб. 2002. - 25 с.
32. Okada S. Radiation Biochemistri. - N.Y.: Acad. Press, New York, 1970. - Vol. 1. - P. 220.

Введение

Недостаточность защитных механизмов организма приводит к появлению различных заболеваний, особенно у молодняка в первые месяцы жизни [14, 23, 26]. Эти обстоятельства настоятельно требуют применения эффективных средств, направленных на повышение резистентности организма животных. Определение уровня естественных защитных сил животных и широкое использование их показателей в селекционной работе дает возможность создавать в хозяйствах высокорезистентные стада, обеспечивающие высокий уровень продуктивности [6].

В связи со сложной радиоэкологической ситуацией, на территории России и в сопредельных странах несомненную актуальность приобретают исследования эффектов хронического облучения в малых дозах. В условиях хронического облучения имеет место сложная перестройка в системе гемопоэза с вовлечением разнообразных механизмов адаптации [2]. Полагают, что биологические эффекты низкоинтенсивного облучения в малых дозах индуцируются преимущественно опосредовано через системы регуляции, иммунного ответа и антиоксидантного статуса организма, а также путем дестабилизации генома [3, 16, 17]. При содержании животных на территориях с повышенной плотностью загрязнения 137Cs создаются условия хронического радиационного воздействия. К таким территориям относят площади с плотностью загрязнения этим радионуклидом более 1 Ku/км2 (37 кБк/м2) [4]. Установлено, что при радиационном облучении животных на слизистой оболочке и в полости толстого и тонкого кишечника резко снижается число бифидобактерий, лактобактерий и одновременно увеличивается количество условно-патогенных бактерий. Назначение при этом лактобактерий и бифидобактерий нормализует микрофлору кишечника [24]. Пробиотики укрепляют эпителиальный барьер благодаря стимуляции иммунных клеток подслизистого слоя кишечника, предотвращая таким образом перемещение патогенных микроорганизмов через эпителий кишечника [19, 25]. При применении пробиотиков наблюдается повышение жизнеспособности и резистентности, лучшее усвоение питательных веществ корма и более интенсивный рост животных [31, 13]. Микроорганизмы, входящие в состав пробиотиков, активизируют Т- и В- системы иммунитета, влияют на выработку иммуноглобулина А, обусловливающего местный иммунитет слизистой оболочки кишечника [25]. Отмечено повышение фагоцитарной активности макрофагов и нейтрофилов под воздействием различных видов лактобацилл и бифидобактерий, в т.ч. L. acidophilus, L. casei, В.longum, B. bifidum и др. [5].

До сих пор остаются нерешенными вопросы хронического влияния малых доз радиации на животных в удалении от Чернобыльской АЭС на 150-300 км (Брянская область) [1].

Целью наших исследований было изучение влияния комплексного пробиотического препарата лактобацилл на естественную резистентность телят, содержащихся в хозяйстве с повышенной плотностью загрязнения почвы радиоцезием.

Материал и методика исследований

Для проведения опыта в СПК «Родина» Красногорского района Брянской области на МТФ в с. Макаричи были сформированы по методу пар-аналогов 2 группы телят черно-пестрой породы 5-недельного возраста (±2 суток) со средней живой массой 49,53±1,44 кг. Животные 1 группы (5 голов) были контрольными, телята 2 группы (10 голов) - опытными и получали с молоком один раз в сутки лиофилизированный препарат молочнокислых бактерий по 1 г/гол. (2,2۰1010 КОЕ/г) с 5-недельного возраста в течение 21 суток. Телята содержались в соответствующих ветеринарно-зоогигиеническим требованиям условиях, получали молозиво, а затем молоко и другие корма, в соответствии с общепринятыми нормами [18].

В СПК «Родина» Красногорского района плотность загрязнения пашни 137Cs в 1987 (1990) г. составляла 11,74±0,65 Ku/км2 (434,52±24,08 кБк/м2), а пастбищ - 12,98±1,54 Ku/км2 (461,76±61,03 кБк/м2). В 2008 году плотность загрязнения почвы 137Cs в СПК «Родина» Красногорского района существенно снизилась и составляла: пашни - 4,01±0,21 Ku/км2 (144,75±7,98 кБк/м2), а пастбищ - 8,71±1,07 Ku/км2 (330,97±39,28 кБк/м2) (по данным Центра химизации и сельскохозяйственной радиологии «Брянский» ФГБУ «Брянскагрохимрадиология»).

Активность 137Cs в кормах СПК «Родина» в 2011году составляла: в концентратах - 12,50±1,32 Бк/кг; в сене - 91,92±11,48 Бк/кг; в траве - 106,26±16,53 Бк/кг; в молоке - 38,40±4,46 Бк/кг (по данным ФГБУ «Брянская межобластная ветеринарная лаборатория»).

Перед началом опыта, после окончания выпаивания препарата и через 1 месяц после окончания выпаивания препарата у 5 животных из каждой группы утром до кормления брали пробы крови из яремной вены для анализов. Количество лейкоцитов и эритроцитов в крови подсчитывали в камере Горяева, гемоглобин определяли гемиглобинцианидным методом, гематокрит - в гематокритной центрифуге [9]. Фагоцитарный показатель (ФП, %) рассчитывали как процент нейтрофилов, способных к поглощению частиц латекса, фагоцитарный индекс (ФИ, у.е.) - среднее число частиц латекса, поглощенных одним активным нейтрофилом, абсолютный фагоцитоз крови (АФ, 109/л) - общее количество частиц латекса, поглощаемое нейтрофилами в литре крови, фагоцитарное число (ФЧ, у.е.) - среднее количество частиц латекса, приходящееся на один нейтрофил (как активный, так и не активный) [27].

Функционально-метаболическую активность нейтрофилов оценивали по результатам реакции восстановления нитросинего тетразолия в НСТ-позитивных нейтрофилах (+НСТ, %) [28, 29]. Индекс активации нейтрофилов (ИАН) вычисляли согласно инструкции «Реокомплекс» по использованию НСТ-тест набора. Поглотительную способность нейтрофилов (ФП, %, ФИ, у.е., АФ, 109/л) и активность их оксидазных систем (+НСТ, %, ИАН) оценивали в двух состояниях: базальном (баз.) - в свежевзятой крови стабилизированной гепарином, и стимулированном (стим.) - после внесения в пробы крови зимозана, что моделирует условия бактериального заражения и характеризует адаптационные резервы поглотительной и микробицидной способности нейтрофильных гранулоцитов [27]. Показатель резерва оксидазной способности нейтрофилов периферической крови (ПР) и коэффициент их метаболической активации (К) рассчитывали по И.А. Пахмутову, М.С. Ульяновой [20]. Кислородонезависимую микробицидность нейтрофилов периферической крови оценивали по содержанию в них катионных белков по методу В.И. Жибинова [7], рассчитывая средний цитохимический коэффициент (СЦК) по формуле, предложенной Н.А. Макаревичем [12].

Полученные цифровые данные обработаны методом вариационной статистики. Для выявления статистически значимых различий использован критерий Стьюдента по Н.А. Плохинскому [22]. Достоверно значимыми изменения считали при р<0,05. В качестве значений физиологической нормы принимали интервалы соответствующих показателей, приведенные в литературе [9, 28].

Результаты исследований

Анализ полученных результатов показал, что содержание лейкоцитов в крови у подопытных телят перед началом опыта и через 21 сутки выпаивания препарата соответствовало нормативным значениям без существенных межгрупповых различий (табл. 1). Через месяц после окончания выпаивания препарата молочнокислых бактерий произошло достоверное увеличение содержания лейкоцитов в крови телят, получавших пробиотик, как по сравнению с предыдущим периодом исследования (на 76,76%), так и по отношению к количеству этих клеток в крови у контрольных телят (на 67,51%), что указывает на повышение активности защитных механизмов организма телят под воздействием пробиотика. Сумма нейтрофилов всех ядерных форм за весь период исследования находилась в пределах нижних границ физиологической нормы.

У телят опытной группы через месяц после окончания выпаивания препарата отмечено достоверное увеличение ФП в базальных условиях по сравнению с предыдущим периодом на 117,30 %. У телят контрольной группы через 30 суток после окончания опыта произошло достоверно значимое увеличение ФП в базальных условиях как по отношению к предыдущему периоду (на 588,29 %), так и по отношению к телятам опытной группы (на 207,74 %), что указывает на наличие в их организме факторов, активирующих поглотительную способность нейтрофилов крови и на благополучное состояние организма у телят, получавших препарат [15, 21]. После внесения в пробы крови телят подопытных групп зимозана значения фагоцитарного показателя незначительно превышали базальный уровень. Через 21 сутки выпаивания препарата ФП у животных 1 группы после стимуляции проб крови зимозаном существенно не изменился и был ниже как нормативных значений, так и по отношению к первоначальному периоду (на 14,65 %), а также по сравнению с животными опытной группы (на 17,66 %), что, по мнению А.Н. Маянского, свидетельствует о частичной дезактивации этих клеток и снижении резистентности [15]. ФП в стимулированных зимозаном условиях перед началом опыта был значительно ниже нормативных значений и через 21 сутки опытного периода существенно не изменялся. Однако в связи с низким ФП в базальных условиях у телят 1 и 2 групп через 21 сутки опытного периода ФП в условиях стимуляции нейтрофилов крови зимозаном был достоверно выше (на 356,10 % и 437,91 % соответственно) по сравнению с базальными условиями, что указывает на появление адаптационного резерва поглотительной способности нейтрофилов. Через месяц после окончания выпаивания пробиотика ФП в стимулированных зимозаном условиях повышался и был выше у телят контрольной группы на 22,96%, а у телят опытной группы - на 246,24 % (р<0,05) по сравнению с базальным уровнем. Следовательно, применение пробиотика обусловило повышение адаптационного резерва числа нейтрофилов крови, способных к поглощению чужеродного материала, на что указывает достоверно более высокий ФП (на 246,24%) в стимулированных зимозаном условиях у телят опытной группы, по сравнению с базальными условиями, через месяц после окончания выпаивания препарата.

Существенных изменений интенсивности поглощения частиц латекса нейтрофилами крови в базальных условиях под действием пробиотика за весь опытный период не установлено.

Таблица 1. Поглотительная способность нейтрофилов крови подопытных телят.

Показатели

Перед началом опыта (5 недель) n=5

Группы

Через 21 сутки опыта (8 недель)

Через месяц после окончания выпаивания препарата(12 недель)

Лейкоциты, 109

4,55 ± 0,73

1,n=5

6,02 ± 0,29

5,54 ± 0,23

2,n=5

5,25 ± 1,45

9,28 ± 1,69

Сумма нейтрофилов,109

1,57 ± 0,29

1,n=5

1,41 ± 0,22

0,92 ± 0,16

2,n=5

1,69 ± 0,80

1,71 ± 0,61

ФП баз., %

 

9,34 ± 1,26

1,n=5

4,10 ± 0,38∆

28,22± 2,51∆□

2,n=5

4,22 ± 0,58∆

9,17 ± 0,88□*

ФП стим., %

 

21,91 ± 2,52

1,n=5

18,70 ± 3,47

34,70± 2,84∆□

2,n=5

22,70 ± 6,9

31,75 ± 3,22

ФИ баз., у.е

 

5,82 ± 0,42

1,n=5

6,97 ± 0,79

7,44 ± 0,30∆

2,n=5

8,15 ± 0,69∆

8,01 ± 0,49∆

ФИ стим., у.е

 

4,52 ± 0,34

1,n=5

5,17 ± 0,45

6,44 ± 0,25∆

2,n=5

5,50 ± 0,36

6,61 ± 0,29∆

АФ баз., 109

 

0,88 ± 0,23

1,n=5

0,39 ± 0,07

1,85 ± 0,12∆□

2,n=5

0,53 ± 0,24

2,46 ± 0,73

АФ стим., 109

1,42 ± 0,10

1,n=5

1,34 ± 0,35

2,01 ± 0,29

2,n=5

1,70 ± 0,63

3,53 ± 1,15

ФЧ баз., у.е.

0,52 ± 0,05

1,n=5

0,28 ± 0,03∆

2,15 ± 0,21∆□

2,n=5

0,31 ± 0,04∆

1,50 ± 0,15∆□

ФЧ стим., у.е.

1,03 ± 0,19

1,n=5

1,00 ± 0,22

2,23 ± 0,19∆□

2,n=5

1,25 ± 0,40

1,99 ± 0,34

Примечание: * - р<0,05 по отношению к контрольной группе, - р<0,05 по отношению к первоначальному периоду,- р<0,05 по отношению к предыдущему периоду.

Фагоцитарный индекс в стимулированных зимозаном условиях у телят подопытных групп во все периоды исследования существенно не отличался от величины этого показателя в базальных условиях и был ниже нормативных значений, что говорит об отсутствии адаптационного резерва интенсивности поглощения чужеродного материала нейтрофильными гранулоцитами. Это указывает на экстенсивный путь защиты, только за счет повышения числа активных нейтрофилов в крови у животных через месяц после окончания выпаивания препарата.

Величина абсолютного фагоцитоза в базальных условиях перед началом опыта и через 21 сутки опытного периода у животных обеих групп соответствовала наименьшим нормативным значениям без существенных межгрупповых различий. При этом через месяц после окончания выпаивания препарата молочнокислых бактерий наблюдалось достоверно значимое увеличение АФ в базальных условиях у телят контрольной группы, как по сравнению с первоначальным периодом (на 110,23 %), так и по сравнению с предыдущим периодом (на 374,36 %). У телят опытной группы достоверные изменения отсутствовали. В индуцированных зимозаном условиях величина этого показателя существенно не изменялась у животных всех подопытных групп и была ниже физиологически нормальных значений. Через месяц после окончания выпаивания препарата молочнокислых бактерий отмечена тенденция к увеличению АФ в стимулированных зимозаном условиях у телят опытной группы (на 107,65 %), как по сравнению с предыдущим периодом, так и (на 75,62 %) по сравнению с контрольными животными, что указывает на наличие адаптационного резерва числа нейтрофилов крови, способных к поглощению чужеродного материала у телят опытной группы.

Фагоцитарное число в базальных условиях у животных 1 и 2 групп через 21 сутки опытного периода было достоверно ниже, по сравнению с началом опыта (на 46,15 % и на 40,39 % соответственно). Это указывает на отсутствие необходимости активации нейтрофилов крови и, соответственно, благополучное состояние организма животных в этот период. Через месяц после окончания опыта наблюдалось достоверное увеличение этого показателя у телят контрольной группы, как по сравнению с началом опыта (на 313,46 %) так и по сравнению с 21-суточным возрастом (на 667,86 %). ФЧ в базальных условиях через месяц после окончания выпаивания пробиотика у телят опытной группы по сравнению с началом опыта достоверно увеличилось на 188,46 % и по сравнению с предыдущим периодом исследования - на 383,87 %. При этом ФЧ в базальных условиях у телят опытной группы было ниже на 30,23 %, чем у телят контрольной группы, что свидетельствует о более благополучном состоянии их организма. Фагоцитарное число в стимулированных зимозаном условиях значительно не различалось у телят обеих групп во все периоды исследования и незначительно превышало значения этого показателя в базальных условиях, не достигая нормативных значений.

Анализ данных, характеризующих кислородозависимую микробицидность нейтрофилов крови (Табл.2), показал, что через месяц после окончания опыта произошло достоверно значимое увеличение относительного количества НСТ- позитивных нейтрофилов у телят опытной группы (на 126,00 %) по сравнению с предыдущим периодом. Это указывает на повышение реактивности оксидазных систем микробицидности под влиянием пробиотика.

Содержание НСТ-позитивных нейтрофилов крови в индуцированных зимозаном условиях у подопытных телят перед началом опыта было достоверно выше, чем в базальных условиях на 765,79% но ниже нормативных значений. Через 21 сутки опытного периода уровень НСТ-позитивных нейтрофилов крови в стимулированных зимозаном условиях у животных обеих групп существенно не различался и был ниже нормативных значений с тенденцией к более высоким значениям у телят контрольной группы на 16,90 % (р>0,05) по сравнению с опытной, при этом достоверно превосходил значения этого показателя в базальных условиях у телят контрольной группы на 435,48 % и на 1320 % у телят опытной группы, что указывает на наличие адаптационного резерва НСТ-позитивных нейтрофилов крови телят. При этом относительное количество этих клеток не достигало нормативных значений характерных для телят этого возраста (50,6±4,3 %) [6].

Таблица 2. Микробицидная активность нейтрофилов крови подопытных телят

Показатели

Перед началом опыта (n=5)

Группы

Через 21 сутки опыта (8 недель)

Через месяц после окончания выпаивания препарата(12 недель)

+НСТ баз., %

1,14±0,27

1, n=5

3,10±0,87

2,40±0,51

2, n=5

1,00±0,00

2,26±0,37□

+НСТ стим., %

9,87±1,46

1, n=5

16,6±2,87

8,10±1,00□

2, n=5

14,20±2,11

5,60±1,17□

ИАН баз.

0,01±0,00

1, n=5

0,04±0,01∆

0,03±0,01

2, n=5

0,01±0,00*

0,02±0,01

ИАН стим.

0,12±0,02

1, n=5

0,19±0,04

0,10±0,02

2, n=5

0,16±0,03

0,09±0,02

К

0,87±0,03

1, n=5

0,79±0,07

0,66±0,10

2, n=5

0,92±0,01

0,66±0,09□

ПР

13,45±6,51

1, n=5

7,38±2,34

4,38±1,27

2, n=5

14,20±2,11

3,72±0,86□

СЦК

1,39±0,02

1, n=5

1,40±0,03

1,22±0,04∆□

2, n=5

1,34±0,06

1,30±0,01∆

Примечание: * - р<0,05 по отношению к контрольной группе, - р<0,05 по отношению к первоначальному периоду,- р<0,05 по отношению к предыдущему периоду.

Через месяц после окончания выпаивания препарата у телят 1 и 2 групп отмечено достоверно значимое уменьшение относительного количества НСТ-позитивных нейтрофилов крови в стимулированных зимозаном условиях на 51,20 % и 60,56 % соответственно. При этом количество НСТ- позитивных нейтрофилов в стимулированных зимозаном условиях было выше, чем в базальных условиях на 237,50 % и 147,79 % у телят 1 и 2 групп соответственно, что указывает на наличие адаптационного резерва НСТ-позитивных нейтрофилов крови телят в этот период.

Индекс активации нейтрофилов крови в базальных условиях перед началом опыта был ниже нормативных значений и существенно не изменялся на протяжении опытного периода у животных обеих групп. После внесения в пробы крови зимозана у животных перед началом опыта индекс активации нейтрофилов крови был гораздо выше (в 12 раз), чем в базальных условиях, что свидетельствует о наличии адаптационного резерва этого защитного механизма. Через месяц после окончания выпаивания препарата индекс активации нейтрофилов крови (после стимуляции зимозаном) у телят обеих групп существенно не различался и был ниже нормативных значений. При этом у телят 1 и 2 групп значения этого показателя было выше, чем в базальных условиях на 233,33 % и 350,00 % (р<0,05) соответственно. Следовательно, у телят всех подопытных групп в оба периода исследования имелся адаптационный резерв кислородозависимой микробицидности нейтрофилов крови, в большей степени обусловленный повышением активности оксидазных систем этих клеток (интенсивный путь повышения активности), однако уровень активности кислородозависимых систем нейтрофилов в стимулированных условиях в изученные периоды был ниже нормативных значений.

Скармливание пробиотика «Тетралактобактерин» не оказало существенного влияния на коэффициент метаболической активности кислородозависимых механизмов микробицидности (К), показатель резерва кислородозависимой микробицидности (ПР) и кислородонезависимая микробицидность нейтрофилов крови.

Заключение

Установлено, что у телят, содержавшихся в хозяйстве с повышенной плотностью загрязнения почвы 137Cs, снижена активность защитных механизмов по сравнению с аналогичными животными в чистой зоне. На это указывает более низкое содержание в крови лейкоцитов (на 46,22%, р<0,05) у животных в загрязненной зоне, по сравнению с телятами в чистой зоне [10]. Имеются данные, что в условиях хронического облучения имеет место сложная перестройка в системе гемопоэза с вовлечением разнообразных механизмов адаптации [2]. Снижение активности защитных механизмов организма у телят в загрязненной зоне обусловлено, главным образом, низким уровнем естественной резистентности и, в частности, недостаточностью фагоцитарной функции нейтрофилов, на что указывает более низкий (на 80,50%) ФП в базальных и (на 55,92%) в стимулированных зимозаном условиях, АФ (на 88,95%) в базальных условиях и (на 82,12%) в стимулированных зимозаном, число нейтрофилов крови, обладающих кислородозависимой микробицидностью, как в базальных (на 77,20%), так и в стимулированных условиях (на 64,62%). В ряде работ показано снижение митохондриального дыхания и окислительного фосфорилирования в клетках различных облученных организмов [11, 32]. Индекс активации нейтрофилов в базальных условиях у телят в загрязненном хозяйстве был ниже на 80,00 %(р<0,05). Имеются сведения, что это может быть связано с нарушением структуры мембран клетки [8].

Кислородонезависимая микробицидность нейтрофилов крови у телят в загрязненной зоне была выше на 40,40 % (р<0,05). Возможно, это своего рода компенсаторная реакция организма на более низкую активность механизмов кислородозависимой микробицидности

Ежедневное выпаивание телятам с 5-недельного возраста в течение 21 суток пробиотика «Тетралактобактерин» в дозе 1 г/гол способствовало повышению адаптационного резерва числа нейтрофилов крови, способных к поглощению чужеродного материала, на что указывает достоверное увеличение фагоцитарного показателя (на 246,24%) через месяц после окончания выпаивания пробиотика в условиях стимуляции нейтрофилов крови зимозаном по сравнению с базальным уровнем, более благополучному состоянию организма телят, на что указывает на 75,00 % (р<0,05) более низкий индекс активации нейтрофилов крови в базальных условиях через 21 сутки опытного периода и более низкий фагоцитарный показатель в базальных условиях (на 67,51 % (р<0,05)) через месяц после окончания выпаивания препарата.

Рецензенты:

Яковлева С.Е., д.б.н., профессор, зав. кафедрой частной зоотехнии ФГБОУ ВПО «Брянская государственная сельскохозяйственная академия», Брянская область, п. Кокино.

Зайцева Е.В., д.б.н., профессор, заместитель директора естественно-научного института, заведующая кафедрой зоологии и анатомии, ФГБОУ ВПО «Брянский государственный университет имени академика И.Г. Петровского», г. Брянск.


Библиографическая ссылка

Лифанова Я.В. ВЛИЯНИЕ КОМПЛЕКСНОГО ПРОБИОТИКА «ТЕТРАЛАКТОБАКТЕРИН» НА УРОВЕНЬ ЕСТЕСТВЕННОЙ РЕЗИСТЕНТНОСТИ ТЕЛЯТ, СОДЕРЖАВШИХСЯ НА ТЕРРИТОРИИ С ПОВЫШЕННОЙ ПЛОТНОСТЬЮ ЗАГРЯЗНЕНИЯ ПОЧВЫ 137CS. // Современные проблемы науки и образования. – 2013. – № 6.;
URL: http://science-education.ru/ru/article/view?id=11816 (дата обращения: 26.04.2019).

Предлагаем вашему вниманию журналы, издающиеся в издательстве «Академия Естествознания»
(Высокий импакт-фактор РИНЦ, тематика журналов охватывает все научные направления)

«Фундаментальные исследования» список ВАК ИФ РИНЦ = 1.252