Длительный посмертный интервал осложняет получение генетического материала, пригодного для идентификации личности, поскольку клеточные структуры и нуклеиновые кислоты постепенно разрушаются. Особенно сложными являются исследования скелетированных, фрагментированных, эксгумированных и термически измененных останков, где выбор биологического объекта зависит от сохранности ткани и условий внешней среды. Цель исследования – провести сравнительный анализ сохранности дезоксирибонуклеиновой кислоты в пульпе зуба и костном мозге при длительном посмертном интервале с учетом данных о цементе зуба, каменистой части височной кости, компактной и губчатой кости, температуре, влажности, кислотно-щелочных свойствах почвы и микробных сообществах. Выполнен аналитический обзор научных публикаций, изданных с 2015 по 2026 г. В анализ включались работы, содержащие сведения о типе ткани, посмертном интервале, условиях захоронения или хранения, способе выделения генетического материала и результативности молекулярно-генетического исследования. Пульпа зуба имеет высокую идентификационную ценность благодаря защите эмалью, дентином и цементом, однако ее преимущество зависит от состояния зуба. Костный мозг быстрее подвергается микробной и гидролитической деградации, тогда как плотные зубные и костные структуры дольше ограничивают внешнее воздействие. Пульпа зуба является перспективным источником генетического материала, но выбор объекта должен учитывать состояние останков, среду захоронения и доступность альтернативных костных структур.
A prolonged postmortem interval complicates recovery of genetic material suitable for human identification, because cellular structures and nucleic acids gradually degrade. Research is especially difficult when remains are skeletonized, fragmented, exhumed, or altered by heat, since the choice of biological substrate depends on tissue preservation and environmental exposure. The purpose of the study is to conduct a comparative analysis of the preservation of deoxyribonucleic acid in the tooth pulp and bone marrow during a long postmortem interval, taking into account data on tooth cement, the petrous part of the temporal bone, compact and spongy bone, temperature, humidity, acid-base properties of the soil, and microbial communities. An analytical review of scientific publications issued from 2015 to 2026 was performed. The analysis included studies that reported tissue type, postmortem interval, burial or storage conditions, methods for extracting genetic material, and the effectiveness of molecular genetic examination. Dental pulp has high identification value because it is protected by enamel, dentin, and cementum, but this advantage depends on tooth condition. Bone marrow undergoes microbial and hydrolytic degradation more rapidly, whereas dense dental and skeletal structures may restrict external influence for a longer period. Dental pulp is a promising source of genetic material, but sample selection should consider the condition of remains, burial environment, and the availability of alternative skeletal structures.
1. Верховский А. Е., Апресян С. В., Степанов А. Г. Современные методы идентификации личности в стоматологии // Российский стоматологический журнал. 2024. Т. 28. № 6. С. 624–633. DOI: 10.17816/dent637462.
2. Lopez Toribio R., Castañeda Eugenio N., Manrique de Lara Suarez D. Связь между судебно-медицинской экспертизой ДНК и судебной одонтологией при идентификации личности в случаях массовой гибели людей: систематический обзор // Судебная медицина. 2024. Т. 10. № 3. С. 372–397. DOI: 10.17816/fm16148.
3. Salazar A. M., Huerta P. A., Coliboro-Dannich V., Castro A. F., Barbaro A. Evaluation of DNA in Human Teeth – Ante-Mortem and Post-Mortem Factors Affecting Degradation and Preservation: A Literature Review // Genes. 2025. Vol. 16. Is. 4. Art. 364. DOI: 10.3390/genes16040364.
4. Higgins D., Austin J. J. Teeth as a source of DNA for forensic identification of human remains: a review // Science & Justice. 2013. Vol. 53. Is. 4. P. 433–441. DOI: 10.1016/j.scijus.2013.06.001.
5. Kumar N., Aparna R., Sharma S. Effect of postmortem interval and conditions of teeth on STR based DNA profiling from unidentified dead bodies // Journal of Forensic and Legal Medicine. 2021. Vol. 83. Art. 102246. DOI: 10.1016/j.jflm.2021.102246.
6. Bianchi I., Grassi S., Castiglione F., Bartoli C., De Saint Pierre B., Focardi M., Oliva A., Pinchi V. Dental DNA as an Indicator of Post-Mortem Interval (PMI): A Pilot Research // International Journal of Molecular Sciences. 2022. Vol. 23. Is. 21. Art. 12896. DOI: 10.3390/ijms232112896.
7. Wei Y. F., Lin C. Y., Yu Y. J., Linacre A., Lee J. C. I. DNA identification from dental pulp and cementum // Forensic Science International: Genetics. 2023. Vol. 67. Art. 102945. DOI: 10.1016/j.fsigen.2023.102945.
8. Miura Y., Hashimoto M., Nakamura Y., Ishikawa N. Investigation of a DNA Profiling Method Using Only Cementum More Than 70 Years After Death // Cureus. 2024. Vol. 16. Is. 3. Art. e56998. DOI: 10.7759/cureus.56998.
9. Zupanič Pajnič I., Jeromelj T., Leskovar T. Petrous bones versus tooth cementum for genetic analysis of aged skeletal remains // International Journal of Legal Medicine. 2025. Vol. 139. P. 659–670. DOI: 10.1007/s00414-024-03346-5.
10. Pinhasi R., Fernandes D., Sirak K., Novak M., Connell S., Alpaslan-Roodenberg S., et al. Optimal Ancient DNA Yields from the Inner Ear Part of the Human Petrous Bone // PLoS ONE. 2015. Vol. 10. Is. 6. Art. e0129102. DOI: 10.1371/journal.pone.0129102.
11. Pilli E., Vai S., Caruso M. G., D’Errico G., Berti A., Caramelli D. Neither femur nor tooth: Petrous bone for identifying archaeological bone samples via forensic approach // Forensic Science International. 2018. Vol. 283. P. 144–149. DOI: 10.1016/j.forsciint.2017.12.023.
12. Latham K. E., Miller J. J. DNA recovery and analysis from skeletal material in modern forensic contexts // Forensic Sciences Research. 2019. Vol. 4. Is. 1. P. 51–59. DOI: 10.1080/20961790.2018.1515594.
13. Raffone C., Baeta M., Lambacher N., Granizo-Rodríguez E., Etxeberria F., de Pancorbo M. M. Intrinsic and extrinsic factors that may influence DNA preservation in skeletal remains: A review // Forensic Science International. 2021. Vol. 325. Art. 110859. DOI: 10.1016/j.forsciint.2021.110859.
14. Otagiri T., Sato N., Shiozaki T., Harayama Y., Matsumoto M., Kobayashi K., Asamura H. An optimal skeletal element for DNA testing: Evaluation of DNA quantity and quality from various bone types in routine forensic practice // Legal Medicine. 2024. Vol. 68. Art. 102415. DOI: 10.1016/j.legalmed.2024.102415.
15. Inkret J., Zupanic Pajnic I., Leskovar T. Bone Type Selection for Human Molecular Genetic Identification of Skeletal Remains // Genes. 2025. Vol. 16. Is. 8. Art. 872. DOI: 10.3390/genes16080872.
16. Mckinnon M., Henneberg M., Higgins D. A review of the current understanding of burned bone as a source of DNA for human identification // Science & Justice. 2021. Vol. 61. Is. 4. P. 332–338. DOI: 10.1016/j.scijus.2021.03.006.
17. Lozano-Peral D., Rubio L., Santos I., Gaitán M. J., Viguera E., Martín-de-Las-Heras S. DNA degradation in human teeth exposed to thermal stress // Scientific Reports. 2021. Vol. 11. Art. 12118. DOI: 10.1038/s41598-021-91505-8.
18. Salazar Roa A. M., Huerta P. A., Coliboro-Dannich V., Castro A. F., Barbaro A. Impact of heat on dental structures and DNA recovery in forensic science: a systematic review // Egyptian Journal of Forensic Sciences. 2025. Vol. 15. Art. 36. DOI: 10.1186/s41935-025-00496-4.
19. Jeromelj T., Leskovar T., Zupanič Pajnič I. The Impact of Storage Conditions on DNA Preservation in Human Skeletal Remains: A Comparison of Freshly Excavated Samples and Those Stored for 12 Years in a Museum Depot // Genes. 2025. Vol. 16. Is. 1. Art. 78. DOI: 10.3390/genes16010078.
20. Eriksen A. M. H. et al. Exploring DNA degradation in situ and in museum storage through genomics and metagenomics // Communications Biology. 2025. Vol. 8. Art. 284. DOI: 10.1038/s42003-025-07616-9.
21. Kravanja P., Golob A., Concato M., Leskovar T., Zupanič Pajnič I. Effects of different environmental factors on preservation of DNA in petrous bones: A comparative study of two Slovenian archaeological sites // Forensic Science International. 2025. Vol. 371. Art. 112495. DOI: 10.1016/j.forsciint.2025.112495.
22. McDonald C., Taylor D., Linacre A. STR-Uggles: Overcoming Humic Acid Inhibition Using Combined STR & qPCR Kit Chemistries // Genes. 2025. Vol. 16. Is. 11. Art. 1326. DOI: 10.3390/genes16111326.
23. Bhoyar L., Mehar P., Chavali K. An overview of DNA degradation and its implications in forensic caseworks // Egyptian Journal of Forensic Sciences. 2024. Vol. 14. Art. 15. DOI: 10.1186/s41935-024-00389-y.
24. Finaughty C., Heathfield L. J., Kemp V., Márquez-Grant N. Forensic DNA extraction methods for human hard tissue: A systematic literature review and meta-analysis of technologies and sample type // Forensic Science International: Genetics. 2023. Vol. 63. Art. 102818. DOI: 10.1016/j.fsigen.2022.102818.
25. Андреева Т. В., Малярчук А. Б., Сошкина А. Д., Дудко Н. А., Плотникова М. Ю., Рогаев Е. И. Методологии выделения древней ДНК из костной ткани для геномного анализа: подходы и практические рекомендации // Генетика. 2022. Т. 58. № 9. С. 979–998. DOI: 10.31857/S001667582209003X.
26. Земскова Е. Ю., Иванов П. Л. О возможности применения молекулярно-генетического идентификационного анализа для неопознанных останков тел, захороненных в период Великой Отечественной войны // Судебная медицина. 2021. Т. 7. № 2. С. 77–82. DOI: 10.17816/fm379.
27. Корниенко И. В., Панова Т. Д., Фалеева Т. Г., Арамова О. Ю., Сидоренко Ю. С. Молекулярно-генетическая идентификация безымянных захоронений первой половины XVI в. из некрополя Вознесенского собора Московского Кремля // Генетика. 2022. Т. 58. № 2. С. 206–218. DOI: 10.31857/S0016675822020072.