В данной работе мы сравнили нейроинвазивность вариантов вируса клещевого энцефалита (ВКЭ), полученных при адаптации к иксодовым клещам: к одному из основных переносчиков ВКЭ Ixodes ricinus и к второстепенному переносчику Dermacentor reticulatus. Согласно полученным данным, репродукция ВКЭ в клещах – основных переносчиках может приводить к повышению нейроинвазивности вируса, что указывает на схожее первоначальное селективное воздействие клеток клещей и клеток ЦНС млекопитающих, несмотря на различные максимальные титры вируса в данных системах. Адаптация ВКЭ к клещам путем пассирования приводит к появлению в популяции вариантов, обладающих мелкобляшечным фенотипом в культуре клеток СПЭВ, и к снижению нейроинвазивности вируса. Данные изменения характерны для вирусной популяции, адаптированной как к основным, так и к второстепенным переносчикам ВКЭ.
In this study we compared the neuroinvasiveness of the variants of the tick-borne encephalitis virus (TBEV) obtained by adaptation to the ticks: to the one of the main vectors of TBEV Ixodes ricinus and to the secondary vector Dermacentor reticulatus. According to our data TBEV reproduction in the main-vector ticks may result in the increase of the virus neuroinvasiveness for white mice, indicating a similar initial selective impact of the tick cells and mammalian CNS cells in spite of the different maximum virus titers in these systems. Adaptation of TBEV to ticks through passages leads to the emergence of variants with the small-plaque phenotype in PEK cells, and to the decrease of the virus neuroinvasiveness. These changes are characteristic of the virus population, adapted to both primary and secondary TBEV vectors.
1. Дживанян, Т.И. Изменение зависимых от хозяина характеристик вируса клещевого энцефалита при его адаптации к клещам и переадаптации к белым мышам / Т.И. Дживанян, М.Б. Королев, Г.Г. Карганова [и др.] // Вопр. вирусол. – 1988. - №5. – С. 589-595.
2. Методы определения эффективности инсектицидов, акарицидов, регуляторов развития и репеллентов, используемых в медицинской дезинсекции // МУК 3.5.2 1759-03. – М.: Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава России. – 2004. – 87с.
3. Нельзина, Е.Н. Крысиный клещ. // М.: Изд-во АМН СССР. – 1950. – 100с.
4. Погодина, В.В. Явление антигенной дефектности у циркулирующих в природе штаммов вируса клещевого энцефалита и его возможная связь с серонегативными формами заболевания / В.В. Погодина, Н.Г. Бочкова, Т.И. Дживанян [и др.] // Вопр. вирусол. – 1992. - №2. – С.103-107.
5. Belova, O.A., Burenkova, L.A., Karganova, G.G. Different tick-borne encephalitis virus (TBEV) prevalences in unfed versus partially engorged ixodid ticks – Evidence of virus replication and changes in tick behavior // Ticks and Tick-borne Diseases – 2012, No 3. – P. 240– 246.
6. Chausov, E.V., Ternovoi, V.A., Protopopova, E.V., et al. Variability of the tick-borne encephalitis virus genome in the 5' noncoding region derived from ticks Ixodes persulcatus and Ixodes pavlovskyi in Western Siberia // Vector Borne Zoonotic Dis. – 2010. – Vol. 10, No 4. – P. 365-375.
7. Khasnatinov, M.A., Ustanikova, K., Frolova, T.V., et al. Non-hemagglutinating flaviviruses: molecular mechanisms for the emergence of new strains via adaptation to European ticks. // PLoS One. – 2009. – Vol.4, No 10. - e7295.
8. Kozlovskaya, L.I., Osolodkin, D.I., Shevtsova, A.S., et al. GAG-binding variants of tick-borne encephalitis virus // Virology. – 2010. – Vol. 398, No 2. – P. 262-272.
9. Labuda, M., Jiang, W.R., Kaluzova, M., et al. Change in phenotype of tick-borne encephalitis virus following passage in Ixodes ricinus ticks and associated amino acid substitution in envelope protein. // Virus Res. – 1994. – Vol. 31 – P. 305-315.
10. Lorenz, R.J., Bogel, K. Methods of calculation. / In: Kaplan, M.M., Koprowski, H. (Eds.), Laboratory techniques in rabies, 3rd ed. World Health Organization, Geneva. – 1973. – P. 321–335.
11. Mandl, C.W., Kroschewski, H., Allison, S.L. et al. Adaptation of tick-borne encephalitis virus to BHK-21 cells results in the formation of multiple heparan sulfate binding sites in the envelope protein and attenuation in vivo. // J. Virol. – 2001. – Vol. 75. – P. 5627-5637.
12. Romanova, L.Iu., Gmyl, A.P., Dzhivanian, T.I. et al. Microevolution of Tick-Borne Encephalitis virus in course of host alternation. // Virology. – 2007. – Vol. 362, No 1. – P. 75-84.