В статье рассматривается ультраструктура эндотелиальных клеток межклапанного сегмента и створки клапана лимфатического коллектора на примере грудного протока кошки. Основным методом исследования является трансмиссионная электронная микроскопия. Толщина эндотелия варьирует в зависимости от места локализации среза: в ядерной зоне толщина клетки существенно больше, чем на периферических участках. Показано, что в обеих анализируемых зонах синтетический аппарат эндотелиальных клеток хорошо развит. Комплекс Гольджи ориентирован вдоль продольной оси клетки и характеризуется небольшим размером диктиосом. На поверхности плазматической мембраны клеток обнаружены многочисленные кавеолы. Описаны трансэндотелиальные каналы (или везикулярно-вакуолярная органеллы), которые в большей степени выражены в периферической зоне эндотелиальных клеток. В эндотелиальных клетках створок клапанов средняя объемная плотность везикул достоверно ниже, чем в клетках межклапанного сегмента.
The article discusses the endothelial cells’s ultrastructure of inter valve segment and valve leaflets of lymph collector illustrated by cats thoracic duct. The main research method is a transmission electron microscopy. The thickness of the endothelium varies depending on the localization cut: nuclear zone thickness of cells is substantially greater than in the peripheral areas. It is shown that in both analyzed areas synthetic apparatus of endothelial cells is well developed. Golgi complex is oriented along the longitudinal axis of the cell and is characterized by small size dictyosomes. On the surface of the plasma membrane of cells found numerous caveolae. Described transendothelial channels (or vesicular-vacuolar organelles) that are more pronounced in the peripheral zone of endothelial cells. In the endothelial cells of valve leaflets average bulk density of the vesicles is significantly lower than in cells inter valve segment.
1. Банных С. И. Клапанный аппарат и тканевая организация эндотелия грудного протока / И. С. Сесорова, А. А. Миронов мл., В. А. Миронов, В. К. Шишло, В. А. Колпаков, А. А. Миронов // Морфология. – 1996. – T. 109, № 1. – С. 40–50.
2. Сесорова И. С. Морфофункциональный анализ строения комплекса Гольджи фибробластов животных / И. С. Сесорова // Морфология. – 2010. – T. 137, № 4. – С. 173.
3. Сесорова, И. С. Оценка состояния эндотелиального монослоя после реэндотелизации участка криоповреждения грудного протока / И. С. Сесорова, Т. В. Лазоренко // Морфология. – 2009. – T. 136, № 6. – С. 57–61.
4. Cao G. Angiogenesis in platelet endothelial cell adhesion molecule-1-null mice / G. Cao, M. L. Fehrenbach, J. T. Williams, J. M. Finklestein, J. X. Zhu, H. M. Delisser // Am. J. Pathol. – 2009. – 175(2). – Р. 903–915.
5. Feng D. Ultrastructural studies define soluble macromolecular, particulate, and cellular transendothelial cell pathways in venules, lymphatic vessels, and tumor-associated microvessels in man and animals / D. Feng, J. A. Nagy, H. F. Dvorak, A. M. Dvorak // Microsc. Res. Tech. – 2002. – 57(5). – Р. 289–326.
6. Hayer A. Caveolin‐1 is ubiquitinated and targeted to intralumenal vesicles in endolysosomes for degradation / A. Hayer, M. Stoeber, D. Ritz, S. Engel, H. H. Meyer, A. Helenius // J. Cell Biol. – 2010. – 191(3). – Р. 615–629.
7. Metcalf D. J. Formationand function of Weibel-Palade bodies / D. J. Metcalf, T. D. Nightingale, H. L. Zenner, W. W. Lui‐Roberts, D. F. Cutler // J. Cell Sci. – 2008. – 121. – Р. 19–27.
8. Simionescu M. Transcytosis of plasma macromolecules in endothelial cells: a cell biological survey / M.Simionescu, A. Gafencu, F. Antohe. Microsc // Res. Tech. – 2002. – 57(5) – Р. 269–288.
9. Stan R. V. Endothelial stomatal and fenestral diaphragms in normal vessels and angiogenesis / R. V. Stan // J. Cell Mol. Med. – 2007. – 11(4). – Р. 621–643.
10. Valentijn J. A. Actin coating of secretory granules during regulated exocytosis correlates with the release of rab3D. / J. A. Valentijn, K. Valentijn, L. M. Pastore, J. D. Jamieson // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 2000. – 97(3). – Р. 1091–1095.