Изучены этапы морфогенеза в культуре пыльников in vitro генетически маркированных линий подсолнечника. Установлено, что в процессе андрогенеза могут быть реализованы два пути морфогенеза: формирование эмбриодов и органогенез почек, листьев и корней. Определено влияние углеводов в составе индукционной питательной среды и фитогормонов в среде для регенерации. Использование сахарозы по сравнению с мальтозой в среде для культивирования пыльников повышает эффективность каллусогенеза. Выявлена высокая способность к морфогенезу на питательной среде Мурасига-Скуга с добавлением 1 мг/л кинетина, 0,1 мг/л ИУК и 10 мг/л AgNO3. Введение в генофон линии подсолнечника ЮВ-28Б четырех генов окраски язычковых цветков повышает способность клеток и тканей к каллусогенезу и морфогенезу в культуре in vitro. Наибольшее количество корней и листоподобных структур формировалось на каллусах линии с геном l. Проведенные исследования позволяют расширить знания о регуляции процессов каллусогенеза и морфогенеза клеток и тканей подсолнечника in vitro.
Studied the morphogenesis in anther culture in vitro genetically marked lines of sunflower. It is established that the process of androgenesis in vitro can be realized in two morphogenesis pathways: formation of embryoids or organogenesis of shoots, leafs and roots. The influence of carbohydrates in induction medium and growth hormones in the regeneration medium. The use of sucrose as compared with maltose in the culture medium for anther increases the efficiency of callusogenesis. Identified high ability to morphogenesis in regeneration M-S medium with the addition of 1 mg/l of kinetin, 0.1 mg/l IAA and 10 mg/l AgNO3. Introduction four ray flowers coloring genes into the background of line sunflower YV-28B increase the ability of cells and tissues to the callusogenesis and morphogenesis in vitro. The greatest number of roots and leaf type forms were formed on the callus lines with gene l. The conducted research allows us to expand our knowledge about the regulation of the processes of callusogenesis and morphogenesis of cells and tissues of sunflower in vitro.
1. Барнашова Е.К. Использование маркерных генов в селекции сортов и гибридов подсолнечника / Е.К. Барнашова, Е.А. Константинова, Ю.В. Лобачев, В.М. Лекарев // Вопросы биологии, экологии, химии и методики обучения. Сб. науч. статей. Вып. 8. Саратов: СГУ. – 2005. – С. 36-39.
2. Дьяков А.Б. Физиология подсолнечника. – Краснодар: ВНИИМК, 2004. – С. 68-73.
3. Паушева З.П. Практикум по цитологии растений. – 3-е изд., перераб. и доп. – М.: Колос, 1980. – 304 с.
4. Чигрин Т.В., Задорожная О.А., Юшкина Л.Л. Способность к андрогенезу в культуре in vitrо пыльников разных видов подсолнечника // Сборник VI международной конференции молодых ученых и специалистов. – ВНИИМК – 2011. – С. 357-361.
5. Эмбриологические основы андроклинии пшеницы: атлас / Н.Н. Круглова, Т.Б. Батыгина, В.Ю. Горбунова, Г.Е. Титова, О.А. Сельдимирова. – М.: Наука, 2005. – 99 с.
6. Bohorova N.E., Atanassov A.I. Sunflower (Helianthus annuusL.) in vitro production of haploids // Biotech. in Agric. And Forestry. (Ed.). Y.P.S. Bajaj. Berlin. – 1990.–Vol. 12. – P. 428–441.
7. Datta Swapan K. Androgenic haploids: Factors controlling development and its application in crop improvement // Current science. – 2005. – Vol. 89. №11. – P. 1870-1878.
8. Saji K.V., Sujatha M. Embryogenesis and plant regeneration in anther culture of sunflower (Helianthus annus L.) // Euphytica. – 1998. – №103. – P. 1-7.
9. Vijaya Priya K. Androgenetic response of sunflower in diferent culture environments / K. Vijaya Priya, D. Sassikumar, R. Sudhagar et al. // Helia. –2003. – №38. – P. 39–50.
10. Zhong D. Assay for doubled haploid sunflower (Helianthus annuus) plant production by androgenesis: fact or artifact? Part 1: in vitro anther culture / D. Zhong, N. Michaux-Ferriere, M. Coumans // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. – 1995. – № 41. – P. 91-97.