Сетевое издание

Современные проблемы науки и образования

ISSN 2070-7428

"Перечень" ВАК

ИФ РИНЦ = 1,006

• Авторы
• Резюме
• Файлы
• Ключевые слова
• Литература

Кит О.И. 1 Тимошкова М.Ю. 1 Максимов А.Ю. 1 Вереникина Е.В. 1 Лукбанова Е.А. 1 Петрусенко Н.А. 1 Потемкин Д.С. 1 Кечерюкова М.М. 2

---

1 Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации

2 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Ростовский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Целью настоящей работы была оценка эффективности метода жидкостной цитологии в комплексе с оценкой профиля экспрессии миРНК в экзосомах мочи при диагностике рака шейки матки и плоскоклеточных интраэпителиальных поражений шейки матки. В исследование были включены 120 пациенток с раком шейки матки на стадиях T1a1-T2a1N0M0 и 50 пациенток с верифицированными гистологически плоскоклеточными интраэпителиальными поражениями шейки матки, а также 55 здоровых женщин. При постановке диагноза основывались на результатах гистологического анализа. Для проведения жидкостной цитологии собирали биоматериал из области шейки матки, из которого при помощи системы «Cytoscreen» приготавливали тонкослойные мазки. Экспрессию миРНК-20а и -21 в выделенных экзосомах мочи определяли методом ПЦР в реальном времени. Для оптимизации жидкостной цитологии были выбраны миРНК-20а и -21 вследствие их информативности. По результатам только жидкостной цитологии из 120 больных раком шейки матки диагноз совпал у 71,7% пациенток. Диагностическая чувствительность жидкостной цитологии при комплексировании с методом оценки экспрессии миРНК-21 в экзосомах мочи для определения риска развития рака шейки матки составила 80%. Анализ результатов дифференциальной диагностики рака шейки матки и плоскоклеточных интраэпителиальных поражений высокой степени путем жидкостной цитологии показал диагностическую чувствительность 75,4% и специфичность 76%. В противоположность этому использование жидкостной цитологии, оптимизированной с помощью метода оценки уровня экспрессии миРНК-20а, позволило достичь диагностической чувствительности 82,5% и специфичности 92%. Оптимизация жидкостной цитологии с помощью анализа экспрессии миРНК в экзосомах мочи позволила повысить диагностическую чувствительность и специфичность. В заключение следует отметить, что одним из преимуществ оптимизированной жидкостной цитологии с помощью оценки уровня экспрессии миРНК в экзосомах мочи является сочетание высокой информативности с неинвазивным способом забора биоматериала для анализа.

Статья в формате PDF

174 KB

жидкостная цитология

мирнк-20а

мирнк-21

экспрессия

рак шейки матки (ршм)

плоскоклеточные интраэпителиальные поражения высокой степени (далее – пип вс)

1. Williamson A.L., Grant–Kels J. The interaction between human immunodeficiency virus and human papillomaviruses in heterosexuals in Africa. Journal of clinical medicine. 2015. V. 4 (4). Р. 579-592. DOI: 10.3390/jcm4040579.

2. Казаишвили Т.Н. Ранняя диагностика рака шейки матки методом жидкостной цитологии // I Национальный конгресс «Онкология репродуктивных органов от профилактики и раннего выявления к эффективному лечению». 2016. № 81. С. 80-81.

3. Кипкеева Ф.М., Музаффарова Т.А., Никулин М.П., Апанович П.В., Нариманов М.Н., Малихова О.А., Кушлинский Н.Е., Стилиди И.С., Карпухин А.В. Группа микроРНК в качестве кандидатов в прогностические биомаркеры метастазирования рака желудка // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2020. № 169 (1). С. 84-87.

4. Кит О.И., Тимошкина Н.Н., Пушкин А.А., Способ дифференциальной диагностики глиом на основании анализа экспрессии генов и микроРНК. Патент на изобретений RV 2709651 C1, 19.12.2019.

5. Кит О.И., Водолажский Д.И., Тимошкина Н.Н. Роль микроРНК в регуляции сигнальных путей при меланоме // Молекулярная медицина. 2017. № 15 (1). С. 15-23.

6. Архангельская П.А., Бахидзе И.В., Берлев Е.В. МикроРНК, ВПЧ–инфекция и цервикальный канцерогенез. Молекулярные аспекты и перспективы клинического использования // Сибирский онкологический журнал. 2016. № 15 (4). С. 88-97. DOI: 10.21294/1814-4861-2016-15-4-88-97.

7. Blackburn E.H. Telomere states and cell fates. Nature. 2000. V. 408. Р. 53-56. DOI: 10.1038/35040500.

8. Yao Т., Lin Z. MiR–21 is involved in cervical squamous cell tumorigenesis and regulates CCL20. Biochimicaet Biophysica Acta. 2012. V. 1822 (2). P. 248-260. DOI: 10.1016/j.bbadis.2011.09.018.

9. Зубаиров Д.М., Зубаирова Л.Д. Эндотелиальные микровезикулы – посредники межклеточных взаимодействий в сосудистом секторе // Тромбоз, гемостаз и реология. 2011. № 2 (46). С. 6-13.

10. Chehna–Patel N., Khole V., Sachdeva G., Warty N. Proteolytic tailoring of the heat shock protein 70 and its implications in the pathogenesis of endometriosis. Fertility and sterility. 2011. V. 95. no 5. P. 1560-1567.

11. Lithwick–Yanai G., Dromi N., Shtabsky A. Multicentre validation of a microRNAbased assay for diagnosing indeterminate thyroid nodules utilising fine needle aspirate smears. J. Clin. Pathol. 2017. V. 70 (6). P. 500-507.

12. Xin F., Liu P., Ma C–F. A circulating serum miRNA panel as early detection biomarkers of cervical intraepithelial neoplasia. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2016. V. 20 (23). P. 4846-4851.

13. Pathare G., Dhayat N.A., Mohebbi N., Wagner C.A., Bobulescu I.A., Moe O.W., Fuster D.G. Changes in V-ATPase subunits of human urinary exosomes reflect the renal response to acute acid/alkali loading and the defects in distal renal tubular acidosis. Kidney Int. 2018. V. 93 (4). Р. 871-880. DOI: 10.1016/j.kint.2017.10.018.

14. Pfaffl M.W. A new mathematical model for relative quantification in real–time RT–PCR. Nucleic Acids Res. 2001. V. 29 (9). DOI: 10.1093/nar/29.9.e45.

15. Hasanzadeh M., Movahedi M., Rejali M., Maleki F. The potential prognostic and therapeutic application of tissue and circulating microRNAs in cervical cancer. J. Cell. Physiol. 2019. V. 234. P. 1289-1294. DOI: 10.1002/jcp.27160.

16. Ola S. Ali, Marwa I. Shabayek, Mae M. Seleem, Heba G. Abd El-Aziz Nasr, Dalia O. Makhlouf. MicroRNAs 182 and 375 Sera Expression as Prognostic Biochemical Markers in Breast Cancer. Clinical Breast Cancer. 2018. V. 18. no. 6. Р. e1373-1379.

17. Shuying Wu, Hong Chen. Anti Condyloma acuminata mechanism of microRNAs 375 modulates HPV in cervical cancer cells via the UBE3A and IGF 1R pathway. Oncology letters. 2018. V. 16. Р. 3241-3247. DOI: 10.3892/ol.2018.8983.

Среди всех онкозаболеваний у женщин рак шейки матки (РШМ) представляет собой довольно распространенную патологию [1]. При этом РШМ, выявленный на ранних стадиях онкогенеза, хорошо поддается лечению. В связи с этим очень важным для современной медицины является совершенствование диагностических приемов.

В настоящее время одним из принятых диагностических методов служит жидкостная цитология (ЖЦ). «Влажная» фиксация исследуемого биоматериала, лежащая в основе метода ЖЦ, позволяет свести к минимуму наличие крови, бактерий и артефактов, а также сохранить иммунологические и морфологические особенности исследуемых клеток в неизменном виде, что выгодно отличает данный метод диагностики от других [2].

Дополнительным методом диагностики можно считать скрининг ряда онкомаркеров, таких как миРНК [3, 4]. МиРНК являются особыми низкомолекулярными РНК, участвующими в регуляции экспрессии генов на разных уровнях [5]. Они обладают высокой специфичностью и стабильностью [6]. Большую роль в онкогенезе выполняют онкогены миРНК-20а и -21. МиРНК-20a участвует в инвазии рака, усиливает пролиферацию и миграцию опухолевых клеток [7]. МиРНК-21 способствует росту опухоли, регулирует пролиферацию, апоптоз и миграцию клеток шейки матки (ШМ) [8]. Основываясь на литературных данных, мы выбрали миРНК-20а и -21 в качестве диагностических онкомаркеров.

Высокоинформативным приемом скрининга могут считаться исследования экзосом, участвующих в межклеточных взаимодействиях [9]. В состав экзосом могут входить различные комплексы молекул, такие как факторы передачи, ферменты обмена веществ, апоптотические белки (обозначается Alix), протеолитические протеины шапероны (защитные устройства для теплового шока: Hsp70 и Hsp90), а также миРНК [10]. Тот или иной молекулярный состав экзосом способен быть показателем определенных патологических либо естественных преобразований в клетках [11]. Доказано, что миРНК могут присутствовать в различных тканях и в природных жидкостях человеческого организма (в крови, моче), при этом они остаются стабильными в структуре подобных жидкостей достаточно долго [12]. Таким образом, оценка профиля определенных миРНК в экзосомах мочи может являться высокоинформативным показателем.

Целью настоящей работы была оценка эффективности метода жидкостной цитологии в комплексе с оценкой профиля экспрессии миРНК в экзосомах мочи при диагностике некоторых патологий рака шейки матки, таких как рак шейки матки и плоскоклеточные интраэпителиальные поражения шейки матки.

Материалы и методы исследования

Общая характеристика клинического исследования. Работа была выполнена на базе отделения онкогинекологии ФГБУ «НМИЦ онкологии» Минздрава России. В исследование были включены 120 пациенток с РШМ на стадиях T1a1-T2a1N0M0 и 50 пациенток с верифицированными гистологически плоскоклеточными интраэпителиальными поражениями (ПИП) шейки матки высокой степени (ВС) и низкой степени (НС), наблюдавшиеся с 2015 г. по 2020 г., а также 55 здоровых женщин. Условием включения в исследование было наличие экспрессии миРНК-20а и миРНК-21 в экзосомах мочи. Для постановки диагноза основывались на результатах гистологического анализа в соответствии со стандартами диагностики злокачественных новообразований шейки матки и морфологической системой Бетесда.

Получение экзосом мочи. Для получения высокочистых экзосомальных мембран 20 мл собранной мочи центрифугировали при 17000 g в течение 15 минут при 24°C. Супернатант удаляли и инкубировали при комнатной температуре в течение 25 минут. Осадок ресуспендировали в 200 мкл изоляционного раствора (250 ммоль/л сахарозы и 10 ммоль/л триэтаноламин-HCl, pH 7,6) и 50 мкл 3,24 моль/л дитиотреитола (DTT), а затем центрифугировали при 17000 g в течение 15 мин при 24°C. Полученный супернатант собирали и объединяли с супернатантом, полученным ранее, и центрифугировали при 20000 g в течение 2 ч при 24°C. Гранулы экзосом растворяли в 50 мкл буфера Лэммли (0,6% мас./об. SDS, 3% об./об. глицерина, 18 ммоль/л Трис-HCl pH 6,8 и 0,003% мас./об. бромфенолового синего) и хранили при –20°C для дальнейшего использования [13].

Жидкостная цитология. Биообразцы собирали из области шейки матки стандартной пластиковой щеткой из набора «Cytoscreen» («Hologic», США), съемную головку которой с отобранным материалом погружали во флакон со стабилизирующим раствором «Cytoscreen». Затем приготавливали тонкослойные мазки, которые окрашивали по Романовскому в модификации Паппенгейма. Микроскопическое исследование препаратов производили с помощью светового микроскопа ЛОМО ЕС БИМАМ Р 11 при 100-кратном увеличении. При интерпретации результатов жидкостной цитологии использовали унифицированные термины системы Бетесда (The Bethesda System, TBS 2014).

Оценка экспрессии миРНК. В работе определяли уровень экспрессии миРНК-20a, -21, -23b и -375. Выделение тотальной РНК из мочи осуществляли сорбентным методом набором «АмплиПрайм РИБО-сорб» («НекстБио», Россия). Образцы обрабатывали ДНКазой (6 ед. активности) в течение 40 мин при комнатной температуре в соответствующем буфере (реагенты «Applied Biosystems», США). Для проведения обратной транскрипции использовали набор «High Capacity cDNA Reverse Transcription Kit» («Applied Biosystems», США). Экспрессию миРНК в экзосомах мочи определяли методом ПЦР в реальном времени с использованием термоциклера «Bio-Rad CFX96» («Bio-Rad», США) и программного обеспечения «Bio-Rad CFX Manager». При этом сравнивали величины пороговых циклов Ct изучаемой и референсной миРНК. Референсными локусами служили миРНК U6 snRNA. Образец везикул мочи исследовали, если экспрессию локуса U6 snRNA обнаруживали при значении порогового цикла Ct до 45 циклов. В каждом образце миРНК амплифицировали трехкратно и рассчитывали усредненное значение порогового цикла Ct. Уровень экспрессии миРНК (RE) был рассчитан по методу Pfaffl M.W. [14]. Уровень экспрессии выражается в условных единицах.

Статистический анализ результатов. При статистическом анализе применяли методы описательной статистики. Для выражения экспрессии миРНК использовали среднее значение и стандартную ошибку средней. При сравнении средних величин применяли критерий Манна–Уитни. Проводили ROC-анализ. Статистический анализ результатов осуществляли с использованием программы Statistica 12.0 (StatSoft, США).

Результаты исследования и их обсуждение

Частота встречаемости миРНК в экзосомах мочи у пациенток с РШМ, ПИП ВС и здоровых приведена в таблице 1. МиРНК-20а, миРНК-21 и миРНК-375 в экзосомах мочи встречались часто (˃70%), а миРНК-23b в экзосомах мочи – редко и независимо от патологии шейки матки, что делает исследование ее экспрессии нецелесообразным. Различий в экспрессии миРНК-20а и миРНК-375 в подгруппах пациенток не наблюдалось. Напротив, миРНК-21 чаще экспрессировалась у пациенток с РШМ (85,5%) и ПИП ВС (86,8%) по сравнению со здоровыми пациентками (69,1%).

Таблица 1

Частота выявления миРНК (абс. (%)) в экзосомах мочи у пациенток в зависимости от патологии шейки матки

Примечание: р – доверительная вероятность, р₁ – «РШМ» vs «ПИП ВС», р₂ – «РШМ» vs «ПИП НС», р3 – «ПИП ВС» vs «ПИП НС», р_мн – множественное сравнение всех подгрупп (мн).

У женщин с РШМ, в отличие от здоровых, уровень экспрессии миРНК-20а в экзосомах мочи был повышен: 0,68±0,13 против 0,06±0,05 (р=0,0001). ROC-анализ показал, что если экспрессия миРНК-20а в экзосомах мочи у пациенток была выше 0,46, то с диагностической чувствительностью 86,8% и специфичностью 82,1% можно говорить о наличии РШМ. При этом площадь под ROC-кривой составила 0,831±0,057, что свидетельствует о хорошем качестве генетического теста (z=5,78, p<0,0001). Экспрессия миРНК-20а в экзосомах мочи у пациенток с РШМ (0,68±0,13) и ПИП ВС (0,32±0,11) статистически значимо различалась (р=0,004). Если экспрессия миРНК-20а в экзосомах мочи у пациенток с патологией шейки матки превышала разделительный уровень 0,53, то с диагностической чувствительностью 91,2% и специфичностью 76% это свидетельствует в пользу диагноза РШМ, а не ПИП ВС, при этом площадь под ROC-кривой составила 0,853±0,050, что свидетельствует о хорошем качестве генетического теста (z=6,87, p<0,0001), сопоставимом диагностике РШМ.

В отношении миРНК-21 установлен высокий уровень экспрессии в экзосомах мочи как при РШМ (0,99±0,15), так и при ПИП ВС (0,78±0,22). При превышении экспрессии миРНК-21 в экзосомах мочи у пациенток разделительного уровня 0,41 с диагностической чувствительностью 92,5% и специфичностью 65,5% можно говорить о РШМ, при этом площадь под ROC-кривой составила 0,805±0,056, что свидетельствует о хорошем качестве генетического теста (z=5,43, p<0,0001). При дифференциальной диагностике РШМ и ПИП ВС по экспрессии миРНК-21 в экзосомах мочи площадь под ROC-кривой имела низкое значение (0,572±0,071), что говорит о низком качестве генетического теста.

Таким образом, было выявлено усиление экспрессии проопухолевых миРНК-20а и -21, что согласуется с литературными данными, согласно которым данные РНК выступают в качестве онкогенных факторов [8, 15].

Уровни экспрессии миРНК-375 в экзосомах мочи у пациенток с РШМ (–0,562±0,08) и у здоровых (–0,04±0,01) статистически значимо различались (р=0,002). Если экспрессия миРНК-375 в экзосомах мочи у пациенток ниже –0,45, то с диагностической чувствительностью 76,9% и специфичностью 79,3% можно сделать вывод о наличии РШМ, при этом площадь под ROC-кривой составила 0,840±0,048, что свидетельствовало о хорошем качестве генетического теста (z=7,04, p<0,0001). У пациенток с ПИП ВС уровень экспрессии миРНК-375 был низким (–0,13±0,06). Различие экспрессии изучаемой миРНК между пациентками с РШМ и ПИП ВС было статистически значимым (р=0,005). Если экспрессия миРНК-375 в экзосомах мочи у пациенток была ниже разделительного уровня –0,50, то с диагностической чувствительностью 87,2% и специфичностью 58,6% можно сформировать заключение о РШМ как альтернативе ПИП ВС. Площадь под ROC-кривой составляла 0,727±0,062, генетический тест разграничения ПИП ВС и РШМ по уровню экспрессии миРНК-375 в экзосомах мочи был статистически значимым (z=3,63, p<0,0003). Таким образом, при снижении уровня экспрессии миРНК-375 повышается вероятность развития РШМ, что согласуется с литературными данными, согласно которым сверхэкспрессия миРНК-375 способствует подавлению пролиферации клеток, повышению активности лактатдегидрогеназы и индуцированию апоптоза в клетках рака шейки матки HPV-18 (+). В еще одной работе было показано, что сверхэкспрессия миРНК-375 усиливает активность каспазы-3 и каспазы-9 и подавляет экспрессию циклина D1 и белка сурвивина в клетках рака шейки матки HPV-18 (+) [16, 17].

Итак, наиболее информативным можно считать метод анализа экспрессии миРНК-20а и сравнения ее уровня с найденными точками cut-off для разделения состояний РШМ и норма, РШМ и ПИП ВС, а также уровня миРНК-21 для диагностики РШМ. Эти миРНК были использованы для оптимизации метода жидкостной цитологии: миРНК-21 для диагностики РШМ, а миРНК-20а для дифференциальной диагностики РШМ и ПИП. Под оптимизацией метода понимается корректировка его результатов с помощью генетических методов.

При диагностике только методом жидкостной цитологии диагноз совпал у 86 (71,7%) из 120 пациенток с РШМ (табл. 2).

Таблица 2

Таблица информативности жидкостной цитологии по выявлению РШМ

Из 120 больных РШМ повышение уровня экспрессии миРНК-21 в экзосомах мочи выше разделительного уровня 0,41 отмечалось у 111 пациенток. При оценке риска развития РШМ по анализу экспрессии миРНК-21 в экзосомах мочи диагностическая чувствительность составляла 92,5%, а специфичность – 65,5%.

Статистическая матрица для расчета информативности оптимизированной жидкостной цитологии в целях выявления РШМ отражена в таблице 3. Диагностическая чувствительность оптимизированной жидкостной цитологии с помощью генетических методов оценки экспрессии миРНК-21 в экзосомах мочи для определения риска развития РШМ составила 80%. Таким образом, оптимизация жидкостной цитологии путем оценки уровня экспрессии миРНК-21 в экзосомах мочи позволила повысить диагностическую чувствительность с 71,7% до 80%.

Таблица 3

Таблица информативности жидкостной цитологии, оптимизированной при помощи генетических методов, для выявления РШМ

Диагностическая чувствительность жидкостной цитологии, проводимой с целью дифференциальной диагностики РШМ и ПИП ВС, составляла 75,4%, а специфичность – 76% (табл. 4).

Таблица 4

Таблица информативности дифференциальной диагностики РШМ и ПИП ВС путем жидкостной цитологии

Повышение экспрессии миРНК-20а в экзосомах мочи выше разделительного уровня 0,53 наблюдалось у 104 из 114 больных РШМ. Диагностическая чувствительность дифференциальной диагностики РШМ и ПИП ВС по анализу экспрессии миРНК-20а в экзосомах мочи составила 91,2%, а специфичность метода – 76%.

Статистическая матрица для расчета информативности оптимизированной жидкостной цитологии для дифференциальной диагностики РШМ и ПИП ВС отражена в таблице 5.

Таблица 5

Таблица информативности жидкостной цитологии, оптимизированной при помощи генетических методов, для дифференциальной диагностики РШМ и ПИП ВС

Диагностическая чувствительность оптимизированной жидкостной цитологии с помощью генетического метода оценки экспрессии миРНК-20а в экзосомах для дифференциальной диагностики РШМ и ПИП ВС составила 82,5%, а специфичность – 92%. Таким образом, оптимизация жидкостной цитологии путем оценки экспрессии миРНК-20а в экзосомах мочи позволила повысить диагностическую чувствительность при дифференциальной диагностике РШМ и ПИП ВС с 75,4% до 82,5%, а диагностическую специфичность – с 76% до 92%.

Заключение

Выбранные для проведения исследования миРНК могут использоваться для оптимизации жидкостной цитологии вследствие своей информативности. Анализ уровня экспрессии миРНК-20а рекомендуется применять для дифференциальной диагностики состояний РШМ и норма, РШМ и ПИП ВС, а уровня миРНК-21 – для диагностики РШМ.

Оптимизация жидкостной цитологии с помощью анализа экспрессии миРНК-21 в экзосомах мочи позволила повысить диагностическую чувствительность с 71,7% до 80%. А при комплексировании жидкостной цитологии с оценкой уровня экспрессии миРНК-20а наблюдалось увеличение диагностической чувствительности дифференциальной диагностики РШМ и ПИП ВС с 75,4% до 82,5%, а специфичности – с 76% до 92%.

В заключение следует отметить, что одним из преимуществ оптимизированной жидкостной цитологии с помощью оценки уровня экспрессии миРНК в экзосомах мочи является сочетание высокой информативности с неинвазивным способом забора биоматериала для анализа. Комплексирование общепризнанного метода жидкостной цитологии с генетическими методами оценки экспрессии онкомаркеров позволит расширить возможности диагностической помощи больным РШМ на ранних стадиях.

Библиографическая ссылка